Buscar en
Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Toda la web
Inicio Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica Detección automática de bacterias y hongos en sangre
Información de la revista
Vol. 26. Núm. S9.
Utilidad de la biología molecular en el diagnóstico microbiológico
Páginas 75-80 (Julio 2008)
Compartir
Compartir
Descargar PDF
Más opciones de artículo
Vol. 26. Núm. S9.
Utilidad de la biología molecular en el diagnóstico microbiológico
Páginas 75-80 (Julio 2008)
Acceso a texto completo
Detección automática de bacterias y hongos en sangre
Automatic detection of bacterial and fungal infections in blood
Visitas
5471
José Miguel Molinaa, Juan Córdobaa, Paula Ramírezb, Miguel Gobernadoa,
Autor para correspondencia
gobernado_mig@gva.es

Correspondencia: Servicio de Microbiología. Hospital La Fe. Avda. Campanar, 21. 46009 Valencia. España.
a Servicio de Microbiología. Hospital La Fe. Valencia. España
b Servicio de Cuidados Intensivos. Hospital La Fe. Valencia. España
Este artículo ha recibido
Información del artículo

La sepsis es una de las principales causas de mortalidad y morbilidad en los hospitales. La detección temprana de los patógenos mediante técnicas basadas en ácidos nucleicos puede facilitar el diagnóstico rápido de la bacteriemia y/o fungemia, la rápida adecuación del tratamiento antibiótico, reducir el uso de antibióticos innecesarios y disminuir la mortalidad. Se describen 2 técnicas disponibles comercialmente que ayudan, en un tiempo reducido, a identificar distintas bacterias y hongos productores de sepsis: LightCycler® SeptiFast Test Mgrade (Roche Diagnostic SL) y GenoType Blood Culture (Hain Lifescience). De estas 2 técnicas, mostramos los resultados de un estudio inicial propio con el LightCycler® SeptiFast Test Mgrade. El estudio se realizó con 50 muestras correspondientes a 28 pacientes (1-3 muestras por paciente) con síndrome séptico ingresados en la unidad de cuidados intensivos, comparando la nueva técnica con el hemocultivo convencional. La concordancia entre los resultados del hemocultivo y el SeptiFast fue buena, 79% en el primer ensayo, y 89% en el segundo, después de corregir defectos técnicos. Inicialmente se observó inhibición importante de los controles internos para los bacilos gramnegativos, por la presencia de heparina en la sangre empleada y un exceso de ácido desoxirribonucleico (ADN) debido al número de leucocitos. Con la finalidad de disminuir las inhibiciones, en otro estudio posterior se trabajó con 24 muestras a la mitad de volumen original, llevando el ácido nucleico extraído a dilución 1:4. Con estas modificaciones, se apreciaron reducciones importantes de las inhibiciones. En comparación con el hemocultivo, el SeptiFast diferencia mejor las contaminaciones por estafilococos coagulasa-negativa y especies de estreptococos.

Palabras clave:
Sepsis
Hemocultivo
SeptiFast
Biología molecular
Técnicas basadas en ácidos nucleicos
LightCycler

Sepsis is one of the main causes of mortality and morbidity in hospitals. Early detection of pathogens using nucleic acid-based techniques speeds diagnosis of bacteremia and/or fungemia, aids the rapid application of appropriate antibiotics, reduces the use of unnecessary antibiotics, and lowers mortality. Two commercially available techniques that help to identify different sepsisproducing bacteria and fungi in a shorter time period are: LightCycler® SeptiFast Test Mgrade (Roche Diagnostic SL) and GenoType Blood Culture (Hain Lifescience). We present the results of an initial in-house study using the LightCycler® SeptiFast Test Mgrade. The study was carried out in 50 samples from 28 patients (1-3 samples per patient) with septic syndrome admitted to the intensive care unit by comparing the new technique with conventional blood culture. The concordance between the results of blood culture and SeptiFast was good, 79%, in the first trial and 89% in the second, after correcting for technical defects. We initially observed substantial inhibition of internal controls in Gram-negative bacilli, due to the presence of heparin in the blood used, and excess DNA because of the high number of leucocytes. To minimize these inhibitions, the second study used 24 samples at half the original volume (extracted DNA at 1/4 concentration). With these modifications, inhibitions were substantially reduced. SeptiFast is more effective than blood culture in discriminating between contamination by coagulase-negative staphylococci and species of streptococci.

Key words:
Sepsis
Blood culture
SeptiFast
Molecular biology
Nucleic acid-based techniques
LightCycler
El Texto completo está disponible en PDF
Bibliografía
[1.]
D.C. Angus, W.T. Linde-Zwirble, J. Lidicker, G. Clermont, J. Carcillo, M.R. Pinsky.
Epidemiology of severe sepsis in the United States: analysis of incidence, outcome, and associated costs of care.
Crit Care Med, 29 (2001), pp. 1303-1310
[2.]
V.Y. Dombrovskiy, A.A. Martin, J. Sunderram, H.L. Paz.
Rapid increase in hospitalization and mortality rates for severe sepsis in the United States: a trend analysis from 1993 to 2003.
Crit Care Med, 35 (2007), pp. 1244-1250
[3.]
W.T. Linde-Zwirble, D.C. Angus.
Severe sepsis epidemiology: sampling, selection, and society.
Crit Care, 8 (2004), pp. 222-226
[4.]
G.S. Martin, D.M. Mannino, S. Eaton, M. Moss.
The epidemiology of sepsis in the United States from 1979 through 2000.
N Engl J Med, 348 (2003), pp. 1546-1554
[5.]
N. Nin, J.A. Lorente, C. Ortiz-Leyba, F. Valenzuela, F. Baigorri, A. López Rodríguez, por la Red para el Estudio del Shock y la Sepsis (RESYS), et al.
Estudio multicéntrico sobre la asociación entre variables relacionadas con la resucitación y la mortalidad en sepsis grave.
Med Intensiva, 29 (2005), pp. 212-218
[6.]
H. Burchardi, H. Schneider.
Economic aspects of severe sepsis: a review of intensive care unit costs, cost of illness and cost effectiveness of therapy.
Pharmacoeconomics, 22 (2004), pp. 793-813
[7.]
J. Iñigo, J.M. Sendra, R. Díaz, C. Bouza, A. Sarría-Santamera.
Epidemiología y costes de la sepsis grave en Madrid: Estudio de altas hospitalarias.
Med Intensiva, 30 (2006), pp. 197-203
[8.]
A. Esteban, F. Frutos-Vivar, N.D. Ferguson, F. Gordo, T. Honrubia, O. Peñuelas, et al.
Incidence and outcomes of sepsis in an health area from Madrid, Spain.
Am J Respir Crit Care Med, 169 (2004), pp. A846
[9.]
F. Álvarez-Lerma, M. Palomar, P. Olaechea, J.J. Otal, J. Insausti, E. Cerdá, Grupo de Estudio de Vigilancia de Infección Nosocomial en UCI.
Estudio Nacional de Vigilancia de Infección Nosocomial en Unidades de Cuidados Intensivos. Informe evolutivo de los años 2003-2005.
Med Intensiva, 31 (2007), pp. 6-17
[10.]
R.P. Dellinger, M.M. Levy, J.M. Carlet, J. Bion, M.M. Parker, R. Jaeschke, et al.
Surviving Sepsis Campaign: International guidelines for management of severe sepsis and septic shock: 2008.
Intensive Care Med, 34 (2008), pp. 17-60
[11.]
M. Meisner.
Biomarkers of sepsis: clinically useful?.
Curr Opin Crit Care, 11 (2005), pp. 473-480
[12.]
C. Mitaka.
Clinical laboratory differentiation of infectious versus non-infectious systemic inflammatory response syndrome.
Clin Chim Acta, 351 (2005), pp. 17-29
[13.]
O.K. Eberhard, M. Haubitz, F.M. Brunkhorst, V. Kliem, K.M. Koch, R. Brunkhorst.
Usefulness of procalcitonin for differentiation between activity of systemic autoimmune disease (systemic lupus erythematosus/systemic antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis) and invasive bacterial infection.
[14.]
S. Hammer, F. Meisner, P. Dirschedl, G. Hobel, P. Fraunberger, B. Meiser, et al.
Procalcitonin: a new marker for diagnosis of acute rejection and bacterial infection in patients after heart and lung transplantation.
Transpl Immunol, 6 (1998), pp. 235-241
[15.]
B. Rau, G. Steinbach, F. Gansauge, J.M. Mayer, A. Grunert, H.G. Beger.
The potential role of procalcitonin and interleukin 8 in the prediction of infected necrosis in acute pancreatitis.
Gut, 41 (1997), pp. 832-840
[16.]
A.E. Jones, J.F. Fiechtl, M.D. Brown, J.J. Ballew, J.A. Kline.
Procalcitonin test in the diagnosis of bacteremia: a meta-analysis.
Ann Emerg Med, 50 (2007), pp. 34-41
[17.]
E.J. Giamarellos-Bourboulis, P. Giannopoulou, P. Grecka, D. Voros, K. Mandragos, H. Giamarellou.
Should procalcitonin be introduced in the diagnostic criteria for the systemic inflammatory response syndrome and sepsis?.
J Crit Care, 19 (2004), pp. 152-157
[18.]
F.C. Tenover.
Rapid detection and identification of bacterial pathogens using novel molecular technologies: infection control and beyond.
Clin Infect Dis, 44 (2007), pp. 418-423
[19.]
B.H. Davis.
Improved diagnostic approaches to infection/sepsis detection.
Expert Rev Mol Diagn, 5 (2005), pp. 193-207
[20.]
T.T. Yip, W.C. Cho, W.W. Cheng, J.W.M. Chan, V.W.S. Ma, T.T. Yip, et al.
Application of ProteinChip array profiling in serum biomarker discovery for patients suffering from severe acute respiratory syndrome.
Methods Mo Biol, 382 (2007), pp. 313-331
[21.]
Suttorp N. Changing population and future trends in the management of serius infections. Disponible en: www.infection academy.org
[22.]
L.R. Peterson, A. Dalhoff.
Towards targeted prescribing: will the cure for antimicrobial resistance by sepecific, directed therapy throught improved diagnostic testing?.
J Antimicrob Chemother, 53 (2004), pp. 902-905
[23.]
W.Z. Zhang, T.Q. Han, Y.Q. Tang, S.D. Zhang.
Rapid detection of sepsis complicating acute necrotizing pancreatitis using polymerase chain reaction.
World J Gastroenterol, 7 (2001), pp. 289-292
[24.]
A. Huletsky, R. Giroux, V. Rossbach, M. Gagnon, M. Vaillancourt, M. Bernier, et al.
New real-time PCR assay for rapid detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus directly from specimens containing a mixture of staphylococci.
J Clin Microbiol, 42 (2004), pp. 1875-1884
[25.]
S. Poppert, A. Essig, B. Stoehr, A. Steingruber, B. Wirths, S. Juretschko, et al.
Rapid diagnosis of bacterial meningitis by real-time PCR and fluorescence in situ hybridization.
J Clin Microbiol, 43 (2005), pp. 3390-3397
[26.]
I.R. Makhoul, T. Smolkin, P. Sujov, I. Kassis, A. Tamir, R. Shalginov, et al.
PCRbased diagnosis of neonatal staphylococcal bacteremias.
J Clin Microbiol, 43 (2005), pp. 4823-4825
[27.]
M. Kollef, L. Sharpless, J. Vlasnik, C. Pasque, D. Murphy, V.J. Fraser.
Inadequate antimicrobial treatment of infections.
Chest, 115 (1999), pp. 462-474
[28.]
M.J. Espy, J.R. Uhl, L.M. Sloan, S.P. Buckwalter, M.F. Jones, E.A. Vetter, et al.
Real-time PCR in clinical microbiology: applications for routine laboratory testing.
Clin Microbiol Rev, 19 (2006), pp. 165-256
[29.]
A. Klausegger, M. Hell, A. Berger, K. Zinober, S. Baier, N. Jones, et al.
Gram type-specific broad-range PCR amplification for rapid detection of 62 pathogenic bacteria.
J Clin Microbiol, 37 (1999), pp. 464-466
[30.]
R.D. Ruppenthal, F. Souza Pereira, V.V. Cantarelli, I. Silveira Schrank.
Application of broad-range bacterial PCR amplification and direct sequencing on the diagnosis of neonatal sepsis.
Braz J Microbiol, 36 (2005), pp. 29-35
[31.]
S. Harbarth, J. Garbino, J. Pugin, J.A. Romand, D. Lew, D. Pittet.
Inapropiate inicial antimicrobial therapy and its effect on survival in a clinical trial of immunomodulating therapy for severe spesis.
Am J Med, 115 (2003), pp. 529-535
[32.]
J. Costa.
Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a tiempo real.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 22 (2004), pp. 299-305
[33.]
Emrich T, Moczko M, Lohmann S, Mayr J, Stockinger H, Haberhausen G. LightCycler® SeptiFast Test: rapid detection of nosocomial pathogens by real-time PCR. 16th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. Nice, France, April 1-4 2006. Abstract: p962.
[34.]
Lehmann LE, Hunfeld KP, Emrich T, Haberhausen G, Wissing H, Hoeft A, et al. A multiplex real-time PCR assay for rapid detection and differentiation of 25 bacterial and fungal pathogens from whole blood samples. Medical Microbiology and Immunology. Berlin/Heidelberg: Editor Springer; 2007. Published online: 16 november 2007.
[35.]
U. Eigner, M. Weizenegger, A.M. Fahr, W. Witte.
Evaluation of a rapid direct assay for identification of bacteria and the mecA and van genes from positive testing blood cultures.
J Clin Microbiol, 43 (2005), pp. 5256-5262
Copyright © 2008. Elsevier España S.L.. Todos los derechos reservados
Opciones de artículo
Herramientas
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos