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Vol. 24. Núm. 7.
Páginas 437-439 (Agosto 2006)
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Vol. 24. Núm. 7.
Páginas 437-439 (Agosto 2006)
DOI: 10.1157/13091781
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Descripción de un brote de gastroenteritis por y caracterización molecular de la cepa implicada
Description of an outbreak of Campylobacter jejuni gastroenteritis and molecular characterization of the implicated strain
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Juan Carlos Sanza, Rosa de los Ríosb, José Antonio López-Portolésc, José Antonio Taveirab, Cristina Simónc, María Aurora Echeitac
a Laboratorio Regional de Salud P??blica. Instituto de Salud P??blica. Comunidad de Madrid.
b Servicio de Salud P??blica del ??rea 4. Instituto de Salud P??blica. Comunidad de Madrid.
c Laboratorio de Campylobacter. Centro Nacional de Microbiolog??a. Instituto de Salud Carlos III. Madrid. Espa??a.
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Figura 1. Curva epidémica. Distribución de los casos según fecha de inicio de los síntomas. Brote por Campylobacter jejuni.
TABLA 1. Resultados de la tipificación molecular de las 2 cepas estudiadas
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Introducción. El objetivo de este trabajo es describir el estudio de un brote de diarrea por Campylobacter jejuni en una escuela infantil. Métodos. Se obtuvieron coprocultivos en 5 pacientes. La tipificación molecular se realizó mediante (RFLP-PCR flaA), electroforesis en campo pulsante (PFGE) y secuenciación de genes metabólicos (MLST). Resultados. Se aisló Campylobacter jejuni en los 5 enfermos. Sólo pudieron recuperarse para la tipificación 2 cepas. La tipificación mediante los 3 métodos resultó indistinguible en ambos aislamientos. Conclusión. Estos resultados sugieren una identidad común de la cepa causal.
Palabras clave:
Campylobacter jejuni
Brote
Investigación epidemiológica
Tipificación molecular
Introduction. The aim of this study is to describe an outbreak of diarrhea caused by Campylobacter jejuni in a primary school. Methods. Stool samples from five patients were cultured. Molecular typing of the isolated strains was performed using PCR-RFLP-flaA, PFGE and MLST. Results. Campylobacter jejuni was isolated from all five patients. Two of the five strains were available for typing. The DNA patterns of the two isolates were indistinguishable. Conclusion. The results suggest that the causal strain had a common identity.
Keywords:
Campylobacter jejuni
Outbreak
Epidemiological investigation
Molecular typing
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Introducción

Campylobacter constituye, junto con Salmonella la principal causa de diarrea bacteriana en países desarrollados. Este microorganismo se transmite generalmente a través de alimentos de origen animal como aves de corral 1. Otros vehículos de transmisión pueden ser los vegetales contaminados de forma cruzada a partir de productos cárnicos 2. Los cuadros de gastroenteritis por Campylobacter suelen presentarse como casos aislados. No obstante, esporádicamente pueden surgir brotes 3. El objetivo de este estudio es describir un brote de diarrea por Campylobacter jejuni en el que, además de los marcadores fenotípicos de serotipificación y determinación del patrón de resistencias, se realizó una tipificación molecular mediante análisis de los fragmentos de restricción del gen flaA amplificado por el análisis de los fragmentos de restricción PCR (RFLP-PCR flaA), análisis del ADN cromosómico mediante digestión con las enzimas de restricción SmaI y KpnI de baja frecuencia de corte y electroforesis en gel de campos pulsantes (PFGE) y análisis de las secuencias de diversos genes implicados en el metabolismo general de la bacteria (MLST).

Materiales y métodos

Ante la notificación en junio de 2001 de varios casos de gastroenteritis entre los alumnos de una escuela de educación infantil de Madrid se inició una investigación epidemiológica bajo la sospecha de un brote. Se realizó un estudio de cohortes retrospectivo de los alumnos (54 niños). Se definió como caso a todo alumno que hubiera presentado diarrea o vómitos entre el 28 de mayo y el 4 de junio. No se lograron recuperar para su estudio microbiológico muestras de los alimentos incluidos en los menús de la escuela durante ese período. Se obtuvieron 5 muestras de heces de 5 pacientes en las que se realizaron coprocultivos siguiendo una metodología estándar. Las cepas se conservaron congeladas a ­20 °C hasta su caracterización fenotípica y genotípica. La concentración inhibitoria mínima (CIM) frente a eritromicina, ciprofloxacino, amoxicilina, amoxicilina-ácido clavulánico, gentamicina, cloranfenicol y tetraciclina se determinó por el método de E-test (Biodisk). La serotipificación se llevó a cabo mediante hemaglutinación pasiva. La caracterización mediante RFLP-PCR se realizó amplificando el gen flaA siguiendo el protocolo propuesto por CampyNet 4. Los amplificados de ADN se digirieron con la enzima de restricción DdeI (Roche). La tipificación mediante PFGE se efectuó según el protocolo impulsado por el Center for Disease Control and Prevention (CDC) 5 empleando por separado las enzimas de restricción SmaI y KpnI (Takara). En la realización del MLST se siguió el protocolo propuesto por www.mlst.net. Cada uno de los 7 genes estudiados (aspA, glnA, gltA, glyA, pgm, tkt y uncA) fue amplificado por PCR utilizando los iniciadores recomendados en http:// pubmlst.org/campylobacter/mlst-info/cjejuni/primers.htm y a continuación secuenciado en ambas direcciones.

Resultados

Se identificaron 16 casos de gastroenteritis, todos entre alumnos que habían hecho uso del comedor escolar, por lo que la tasa de ataque en expuestos fue del 34,8% (16/46). La edad de los afectados oscilaba entre los 2 y los 3 años. El 43,8% de los casos eran varones. La sintomatología fue diarrea (100%), dolor abdominal (62,5%), fiebre (56,3%), emisión de moco y sangre en heces (25%), vómitos (25%), náuseas (12,5%) y cefalea (6,3%). La duración de los síntomas varió entre 1 y 3 días. Todos los pacientes evolucionaron favorablemente con tratamiento sintomático y sin necesidad de hospitalización.

Al comparar los alumnos que almorzaron en el comedor escolar la semana del 28 de mayo al 1 de junio (46 expuestos) respecto a los que no lo hicieron (8 no expuestos), se estimó un riesgo relativo 3,54 veces superior de padecer gastroenteritis en los expuestos (IC 95%: 0,53-23,64). Para establecer el día más probable en el que se consumió el alimento posiblemente implicado, se tuvo en cuenta la curva epidémica (fig. 1) analizando las fechas de inicio de síntomas del primer y último caso y el rango del período de incubación típico para Campylobacter (2-5 días). Se estableció como fecha más probable el día 30 de mayo; en este día el menú común consistió en crema de zanahorias, pollo asado y fruta. El coprocultivo demostró la presencia de C. jejuni en las 5 muestras de los 5 enfermos estudiados. Tras la congelación sólo pudieron recuperarse para su tipificación dos de estas cepas. Ambos aislamientos, pertenecían al serotipo Penner 37 y mostraron un perfil antibiótico similar (resistencia a ciprofloxacino y a amoxicilina y sensibilidad frente a eritromicina, amoxicilina-ácido clavulánico, gentamicina, cloranfenicol y tetraciclina). La tipificación molecular mediante los 3 métodos empleados mostró una identidad común para las 2 cepas estudiadas (tabla 1).

Figura 1. Curva epidémica. Distribución de los casos según fecha de inicio de los síntomas. Brote por Campylobacter jejuni.

Discusión

A diferencia de otras bacterias como Salmonella spp., las características de C. jejuni (desarrollo microaerofílico y termofílico) dificultan su multiplicación en alimentos cocinados. En ocasiones se ha relacionado la manipulación y el troceado de carne de pollo con la posibilidad de contaminación cruzada 3. Aunque son pocos los brotes en los que se ha encontrado una asociación con manipuladores enfermos esta posibilidad existe 6. En este brote la detección de casos sólo entre los alumnos expuestos a la comida servida en el comedor escolar permitió estimar el riesgo relativo con respecto a los no expuestos. Sin embargo, debido al reducido número de alumnos no expuestos, no se logró establecer una diferencia estadísticamente significativa. Por otra parte, no se consiguieron obtener restos de alimentos para su estudio microbiológico. Tampoco se dispuso de información clínica (antecedentes de gastroenteritis) concerniente a los manipuladores de alimentos del comedor escolar y sólo fue posible señalar alimentos sospechosos sin poder descartar alguna forma de contaminación cruzada. No obstante, el antecedente de ingesta de pollo en un período compatible con el de incubación podría apuntar a este alimento como la fuente de la infección. La evolución de la enfermedad fue autolimitada y en ningún caso se administró tratamiento específico.

Existen diferentes esquemas de serotipificación de Campylobacter. Sin embargo, estos procedimientos no son demasiado discriminatorios y no todas las cepas son tipificables 7. En la actualidad las técnicas más empleadas para la tipificación de Campylobacter son RFLP-PCR flaA y PFGE 8. Esta última se ha mostrado muy útil en la investigación de brotes 8 y ha sido propuesta como el método estándar para tipificación de Campylobacter spp. 9. Una alternativa radica en el uso combinado de varios métodos, preferentemente uno que explore un único locus con otro que determine múltiples loci del genoma. En este sentido la utilización combinada de RFLP-PCR flaA con MLST aporta una discriminación equivalente a PFGE. La evaluación de estos marcadores en cepas españolas procedentes de casos esporádicos ha revelado que los tres presentan un alto índice de discriminación 10. En este estudio sólo fue posible recuperar, para la realización de estudios fenotípicos y genotípicos, 2 cepas de 2 pacientes distintos. Estos 2 aislamientos presentaron el mismo serotipo y patrón antibiótico y mostraron idénticos perfiles mediante RFLP-PCR flaA, PFGE y MLST (este último perfil multialélico resultó único en la base de datos del laboratorio de Campylobacter del Centro Nacional de Microbiología). Considerando el alto poder de discriminación de estos tres procedimientos, los resultados revelan una identidad común para ambas cepas.


Correspondencia: Dr. J.C. Sanz.

Laboratorio Regional de Salud Pública.

General Oraa, 15. 28006 Madrid. España.

Correo electrónico: juan.sanz@madrid.org



Manuscrito recibido el 17-2-2005; aceptado el 13-4-2005.

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