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Vol. 22. Núm. 5.
Páginas 267-271 (Mayo 2004)
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Vol. 22. Núm. 5.
Páginas 267-271 (Mayo 2004)
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Diversidad clonal y sensibilidad a los antimicrobianos de Acinetobacter baumannii aislados en hospitales españoles. Estudio multicéntrico nacional: proyecto GEIH-Ab 2000
Clonal diversity and antimicrobial susceptibility of Acinetobacter baumannii isolated in Spain. A Nationwide Study: GEIH-Ab project (2000)
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Felipe Fernández-Cuencaa,1
Autor para correspondencia
felipefc@us.es

Correspondencia: Dr. F. Fernández-Cuenca. Departamento de Microbiología. Universidad de Sevilla. Apdo. 914. 41009 Sevilla. España
, Álvaro Pascuala,b, Anna Riberac, Jordi Vilac, Germán Boud, José Miguel Cisnerose, Jesús Rodríguez-Bañob, Jerónimo Pachóne, Luis Martínez-Martínezab, de Estudio de infección Hospitalaria (Geih) *
a Departamento de Microbiología. Facultad de Medicina. Universidad de Sevilla
b Servicio de Microbiología y Sección de Enfermedades Infecciosas. Hospital Universitario Virgen Macarena. Sevilla
c Servicio de Microbiología. Hospital Clínic i Provincial. Barcelona
d Servicio de Microbiología. Hospital Juan Canalejo. A Coruña. Sevilla. España
e Servicio de Enfermedades Infecciosas. Hospitales Universitarios Virgen del Rocío. Sevilla. España
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Introducción

El objetivo del estudio fue determinar la relación clonal y la sensibilidad a antimicrobianos de uso clínico de aislados de Acinetobacter baumannii obtenidos en España.

Métodos

Se incluyen 221 aislados consecutivos de A. baumannii obtenidos de muestras clínicas durante noviembre de 2000 en 25 hospitales españoles (proyecto GEIH-Ab 2000). La identificación se realizó mediante pruebas bioquímicas convencionales y genotípicas (análisis del patrón de restricción del ácido desoxirribonucleico ribosomal [ADNr] 16S). La relación clonal entre los aislados se determinó mediante electroforesis en campo pulsante. Las concentraciones inhibitorias mínimas (CIM) de ampicilina (AP), amikacina (AK), cefalotina (CF), cefepima (FP), cefoxitina (FX), ceftazidima (CZ), ciprofloxacino (CP), cotrimoxazol (T/S), doxiciclina (DX), gemifloxacino (GX), gentamicina (GN), imipenem (IP), minociclina (MI), meropenem (MP), piperacilina (PP), polimixina B (PB), rifampicina (RI), sulbactam (SB), tetraciclina (TT) y tobramicina (TO) se determinaron mediante microdilución (normas del National Committee for Clinical Laboratory Standards [NCCLS], 2000).

Resultados

Se diferenciaron 79 clones de a. baumannii. las cim50/cim90 para los 221 a. baumannii fueron > 512/> 512 (pp), > 256/> 256 (ap, cf, fx), > 128/> 128 (tt, gn), 128/> 256 (cz), > 64/> 64 (cp), 64/256 (fp), 32/256 (ak), 32/64 (dx), > 16/> 16 (gx), 16/128 (to), 16/64 (sb, t/s), 8/> 128 (mp), 4/128 (ip), 4/8 (rf), 2/16 (mi) y 1/2 pb). los porcentajes de aislados sensibles fueron 100 (pb), 65,8 (mi), 52,5 (ip), 49,3 (rf), 46,7 (sb), 43,1 (mp), 34,7 (ak), 32,0 (dx), 21,3 (to) y < 20 (cz, fp, gn, t/s, tt, gx, cp, ap, pp, cf y fx).

Conclusiones

Existe una gran diversidad de clones de A. baumannii aislados en España. Los antimicrobianos más activos frente a A. baumannii fueron polimixina B, minociclina, imipenem, rifampicina, sulbactam, meropenem, amikacina y doxiciclina.

Palabras clave:
Acinetobacter baumannii
Diversidad clonal
Sensibilidad
Antimicrobianos
Estudio nacional
Introduction

A nationwide multicenter study was performed in Spain to evaluate the clonal diversity and antimicrobial susceptibility of Acinetobacter baumannii clinical isolates.

Methods

A total of 221 consecutive A. baumannii isolates recovered from clinical samples from 25 Spanish hospitals during November 2000 were studied. Isolate identification was performed by phenotyping methods and by amplified rDNA restriction analysis. Clonal relationships among A. baumannii isolates were determined by pulsed field gel electrophoresis. MICs of amikacin (AK), ampicillin (AP), cephalothin (CF), cefoxitin (FX), ceftazidime (CZ), ciprofloxacin (CP), cotrimoxazole (T/S), doxycycline (DX), gemifloxacin (GX), gentamicin (GN), imipenem (IP), meropenem (MP), minocycline (MI), piperacillin (PP), polymyxin B (PB), rifampicin (RI), tetracycline (TT), sulbactam (SB) and tobramycin (TO) were determined by microdilution (NCCLS guidelines).

Results

Seventy-nine A. baumannii clones were differentiated. MIC50/MIC90 (mg/L) values for the 221 A. baumannii isolates were PP: > 512/> 512; AP, CF, FX: > 256/> 256; TT, GN: > 128/> 128; CZ: 128/> 256; CP: > 64/> 64; FP: 64/256; AK: 32/256; DX: 32/64; GX: > 16/> 16; TO: 16/128; SB, T/S: 16/64; MP: 8/> 128; IP: 4/128; RF: 4/8; MI: 2/16 and PB: 1/2. Percentages of susceptible isolates were PB: 100%; MI: 65.8%; IP: 52.5%, RF: 49.3%; SB: 46.7%; MP: 43.1%; AK: 34.7%; DX: 32.0%; TO: 21.3% and CZ, FP, GN, T/S, TT, GX, CP, AP, PP, CF and FX: < 20%.

Conclusions

A. baumannii isolates show high clonal variability in Spain. The most active antimicrobial agents against this organism were polymyxin B, minocycline, rifampicin, imipenem, sulbactam, meropenem, amikacin and doxycycline.

Key words:
Acinetobacter baumannii
Clonal diversity
Antimicrobial susceptibility
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Bibliografía
[1.]
E. Bergogne-Bérézin, K.J. Towner.
Acinetobacter spp. as nosocomial pathogen: Microbiological, clinical, and epidemiological features.
Clin Microbiol Rev, 9 (1996), pp. 148-165
[2.]
P.J.M. Bouvet, P.A.D. Grimont.
Taxonomy of the genus Acinetobacter with the recognition of Acinetobacter baumannii sp.nov.,Acinetobacter haemolyticus sp. nov., Acinetobacter johnsonii sp. nov., and Acinetobacter junii sp. nov.band emended descriptions of Acinetobacter calcoaceticus and Acinetobacter lwoffii.
Int J Syst Bacteriol, 36 (1986), pp. 228-240
[3.]
P. Gerner-Smidt, I. Tjernberg, J. Ursing.
Reliability of phenotypic tests for identification of Acinetobacter species.
J Clin Microbiol, 29 (1991), pp. 277-282
[4.]
H. Seifert, R. Baginski, A. Schulze, G. Pulverer.
Antimicrobial susceptibility of Acinetobacter species.
Antimicrob Agents Chemother, 37 (1993), pp. 750-753
[5.]
M.I. García Arata, T. Alarcón, M. López Brea.
Emergence of resistant isolates of Acinetobacter calcoaceticus-Acinetobacter baumannii complex in a Spanish hospital over a five-year period.
Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 15 (1996), pp. 512-515
[6.]
J.J. Picazo, C. Betriu, I. Rodríguez-Avial, E. Azahares, B. Ali Sánchez.
Grupo VIRA. Vigilancia de resistencias a los antimicrobianos: estudio VIRA.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 20 (2002), pp. 503-510
[7.]
C.J. Henwood, T. Gatward, M. Warner, D. James, M.W. Stockdale, R.P. Spence, et al.
Antibiotic resistance among clinical isolates of Acinetobacter in the UK, and in vitro evaluation of tigecycline (GAR-936).
J Antimicrob Chemother, 49 (2002), pp. 479-487
[8.]
F. Álvarez Lerma, G. Montserrat Gasulla, V. Abad Peruga, M.J. Pueyo Pont, E. Tarragó Eixarch.
Efectividad del aislamiento de contacto en el control de bacterias multirresistentes en un servicio de medicina intensiva.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 20 (2002), pp. 57-63
[9.]
A. Martínez Pellús, J. Ruiz Gómez, F. Jaime Sánchez, E. Simarro Córdoba, J.A. Fernández Lozano.
Incidencia de colonización e infección de Acinetobacter baumannii en una UCI con situación de endemia. Análisis de factores de riesgo mediante un estudio de vigilancia.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 20 (2002), pp. 194-199
[10.]
M.E. Jiménez-Mejías, J. Pachón, B. Becerril, J. Palomino-Nicas, A. Rodríguez-Cobacho, M. Revuelta.
Treatment of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii meningitis with ampicillin/sulbactam.
Clin Infect Dis, 4 (1997), pp. 932-935
[11.]
M.J. Rodríguez Hernández, J. Pachón, C. Pichardo, J. Ibáñez Martínez, A. García Curiel, F.J. Caballero, et al.
Imipenem, doxycycline and amikacin in monotherapy and in combination in Acinetobacter baumannii experimental pneumonia.
J Antimicrob Chemother, 45 (2000), pp. 493-501
[12.]
A. Montero, J. Ariza, X. Corbella, A. Doménech, C. Cabellos, J. Ayats, et al.
Efficacy of colistin versus β-lactams, aminoglycosides, and rifampin as monotherapy in a mouse model of pneumonia caused by multiresistant Acinetobacter baumannii.
Antimicrob Agents Chemother, 46 (2002), pp. 1946-1952
[13.]
J. Reina, et al.
Sensibilidad de Acinetobacter calcoaceticus-baumannii complex y Acinetobacter lwoffii a los antibióticos de uso clínico.
Rev Enf Infec Micr Clin, 9 (1991), pp. 438-439
[14.]
J. Vila, A. Marcos, F. Marco, S. Abdalla, Y. Vergara, R. Reig.
In vitro antimicrobial production of β-lactamases, aminoglycoside-modifying enzymes, and chloramphenicol acetyltransferase by and susceptibility of clinical isolates of Acinetobacter baumannii.
Antimicrob Agents Chemother, 37 (1993), pp. 138-141
[15.]
J.M. Echeverría, M.J. López de Goicoechea, R. Ayarza, Y. Vecino, M.A. Lazpita, A.B. Ibarretxebea, et al.
Actividad in vitro de 9 antibióticos y 3 inhibidores de beta-lactamasas frente a 107 aislamientos clínicos de Acinetobacter baumannii.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 15 (1997), pp. 319-322
[16.]
S. López Hernández, T. Alarcón, M. López Brea.
Evolución de la sensibilidad antimicrobiana en aislamientos clínicos de Acinetobacter baumannii (1995-1997).
Rev Esp Quimioterap, (2000), pp. 394-400
[17.]
M. Vaneechoutte, L. Dijkshoorn, I. Tjernberg, A. Elaichouni, P. De Vos, G. Caléis, et al.
Identification of Acinetobacter genomic species by amplified ribosomal DNA restriction analysis.
J Clin Microbiol, 33 (1995), pp. 11-15
[18.]
A. Allardet Servent, N. Bouzigues, M.J. Carles Nurit, G. Bourg, A. Gouby, M. Ramuz.
Use of low-frequency-cleavage- restriction endonuclease for DNA analysis in epidemiological investigations of nosocomial bacterial infections.
J Clin Microbiol, 27 (1989), pp. 2057-2061
[19.]
F.C. Tenover, R.D. Arbeit, R.V. Goering, B.E. Mickelsen, D.H. Persing, B. Swaminathan.
Interpreting chromosomal DNA restriction patterns produced by pulsed-field gel electrophoresis: criteria for bacterial strain typing.
J Clin Microbiol, 33 (1995), pp. 2233-2239
[20.]
National Committee for Clinical Laboratory Standards: Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacterial that Grow Aerobically. Approved Standard M7-A5. Wayne PA, NCCLS, 2000
[21.]
Members of the SFM Antibiogram Committee. Comité de l’Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie Report 2003.
Int J Antimicrob Agents, 21 (2003), pp. 364-391
[22.]
L. Dijkshoorn, H. Aucken, P. Gerner-Smidt, P. Janssen, M.E. Kaufmann, J. Garaizar, et al.
Comparison of outbreak and nonoutbreak Acinetobacter baumannii strains by genotypic and phenotypic methods.
J Clin Microbiol, 34 (1996), pp. 1519-1525
[23.]
J. Vila, J. Ruiz, M. Navia, B. Becerril, I. García, S. Perea, et al.
Spread of amikacin resistance in Acinetobacter baumannii strains isolated in Spain due to an epidemic strain.
J Clin Microbiol, 37 (1999), pp. 758-761
[24.]
P. Villari, L. Iacuzio, E.A. Vozzella, U. Bosco.
Unusual genetic heterogeneity of Acinetobacter baumannii isolates in a university hospital in Italy.
Am J Infect Control, 27 (1999), pp. 247-253
[25.]
J. Rodríguez Baño.
Nosocomial bacteriemia due to Acinetobacter baumannii.
Rev Med Microbiol, 10 (1999), pp. 67-77
[26.]
D. Villers, E. Espace, M. Coste-Burel, F. Gianffret, E. Ninin, F. Nicolas, et al.
Nosocomial Acinetobacter baumannii infections: microbiological and clinical epidemiology.
Ann Intern Med, 129 (1998), pp. 182-189

Al final del artículo se ofrece la relación de los miembros del Grupo de Estudio de Infección Hospitalaria (GEIH).

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