Es un hecho contrastado que las hembras viven más que los machos en muchas especies, incluida la humana1,2. Nuestro interés es estudiar los mecanismos por los cuales las hembras de muchas especies viven un 10% más que los machos1. Esto tiene una gran importancia desde el punto de vista teórico como práctico. Desde el punto de vista teórico, el hecho de que en la misma especie solo la diferencia de sexo determine una diferencia de longevidad del 10%, nos permitirá entender mecanismos básicos de envejecimiento.

Por otro lado, el interés práctico de estos estudios es encontrar alguna sustancia que permita alargar la vida a la población masculina.

Basándonos en la acción favorable de los estrógenos y, en concreto, a su interacción con los receptores estrogénicos, las MAP kinasas, el factor nuclear kappa B y la expresión de genes antioxidantes, asociadas a la longevidad, podemos trazar una posible vía1,3–8.

En las últimas décadas, a través de los equipos de tomografía de emisión de positrones (PET) y los diferentes radiofármacos (como el análogo de la glucosa, la 18F-fluorodesoxiglucosa [18F-FDG]) podemos realizar estudios in vivo, no invasivos, para ver cómo afecta el envejecimiento al cerebro humano y al de animales de experimentación9–17.

De hecho, y por ser la glucosa (en esta técnica, la 18F-FDG) uno de los principales sustratos energéticos del organismo, la 18F-FDG ha sido y es la más común entre los diferentes radiofármacos, y es aceptado para detectar y para valorar los procesos tumorales, así como la enfermedad de Alzheimer en humanos y otra multitud de investigaciones en animales.

Esta tecnología se basa en evaluar qué áreas cerebrales se ven afectadas en su función, tanto en estudios longitudinales18,19 como valorando las pautas temporales de dichos cambios.

Han sido varios los estudios llevados a cabo en los que se ha demostrado que la captación de glucosa disminuye a medida que el cerebro envejece20,21. Además, también se ha observado que el descenso en el consumo de glucosa se relaciona con un mayor estrés oxidativo, como ha publicado nuestro grupo recientemente17.

Incluso en aquellas poblaciones con una mayor longevidad (japoneses) se ha confirmado este declinar de la función metabólica cerebral22.

El estudio de aquellas áreas cerebrales que se ven alteradas en su funcionamiento con el paso de la edad20–22 y en situaciones patológicas (enfermedad de Alzheimer, etc.)23,24 nos permite conocer realmente cómo se modula la actividad cerebral en el envejecimiento15,20. Asimismo, resulta interesante el estudio del metabolismo cerebral de la glucosa en una situación como la menopausia, a partir de la cual se incrementa la incidencia de enfermedades en la mujer, como la enfermedad de Alzheimer, sobre todo en el caso de que haya historia materna de dicha enfermedad25,26.

El objetivo, por tanto, de este estudio fue evaluar el efecto del envejecimiento sobre la captación cerebral de glucosa in vivo en ratas y tras la inducción de la menopausia (por medio de la ovariectomía [OVX]).

Animales de experimentación. Se emplearon ratas Wistar hembras de edades comprendidas entre 4–7 meses para los grupos Control (Sham) y OVX, y entre 22–24 meses para el grupo de ratas viejas (V). El estudio se realizó de acuerdo con lo establecido en el Real Decreto 1201/2005, del 10 de octubre, sobre protección de los animales utilizados para experimentación y otros fines científicos (BOE, 21 de octubre de 2005).

Los animales se mantuvieron en el animalario de la Unidad Central de Investigación de la Facultad de Medicina, bajo condiciones de temperatura (23±1°C), humedad relativa (60%) y ciclos de luz/oscuridad (12/12h) constantes. Se alimentaron con una dieta de laboratorio estándar (que contenía 590g de carbohidratos, 30g de lípidos y 160g de proteínas por kilogramo de dieta) y agua del grifo sin restricción en la ingesta.

Los animales se dividieron en los siguientes grupos de experimentación: control (Sham), a los que se realizó la cirugía de manera similar a los grupos de OVX, pero sin llegar a retirar los ovarios. Los animales se sacrificaron tres semanas después de realizar la OVX (grupo OVX 3, n = 5) o tras seis semanas (grupo OVX 6, n = 5); ratas hembras viejas (grupo V, n = 5).

La OVX se llevó a cabo cuando las hembras tenían entre 4 y 7 meses de vida. Para ello, se anestesiaron mediante la administración de isoflurano vaporizado con oxígeno al 2% (Isoflo®, Veterinaria Esteve).

Tras anestesiar a los animales se realizaron 2 pequeñas incisiones longitudinales (8mm) en el lomo de las ratas, a unos 2cm de la línea media a través de la piel y la pared muscular. Una vez localizados los ovarios, se ató firmemente una sutura de seda (Silkam®, Braun-Aesculap, Alemania) alrededor del oviducto y los vasos sanguíneos ováricos, seccionando después el oviducto distalmente a la sutura y extrayendo los ovarios. Al grupo control (Sham) se le realizó el mismo procedimiento, pero sin llegar a retirarle los ovarios.

A continuación, se suturó la pared muscular con una sutura sintética reabsorbible (Safil®, Braun-Aesculap, Alemania) y se cerró la piel con grapas metálicas (Medicon, Instrumente, Alemania). Todos los animales recibieron analgesia postoperatoria mediante 0,1ml de ketoprofeno (Ketofen® al 1%, Merial, Francia) durante la recuperación anestésica.

Imagen cerebral. Estudio del consumo de glucosa in vivo mediante PET en ratas. Entre 3–5 días antes del sacrificio de cada grupo de animales, se procedió a realizar en cada uno de ellos un estudio PET (Albira small animal PET, Oncovision, GEM-Imaging) de cuerpo completo, utilizando como radiotrazador la 18F-FDG. La 18F-FDG fue sintetizada siguiendo el protocolo de Hamacher27. Se mantuvo a los animales entre 8–14h en ayuno antes de anestesiarlos, inyectarles a través de la vena safena el radiotrazador (30–40MBq) e introducir al animal en la cámara PET. Se realizó un protocolo dinámico de adquisición de eventos por secuencias de 1, 2 y 5min hasta completar un período de distribución del radiotrazador por todo el cuerpo de 30min. Seguidamente, el escáner inicia automáticamente otra adquisición dinámica por secuencias, hasta completar 20min, que será la medida tomada para cuantificar el consumo cerebral de glucosa de cada animal estudiado.

Posteriormente, tras finalizar el estudio, los animales se mantuvieron 12h en sus jaulas con comida y agua ad líbitum para eliminar cualquier traza de radiactividad residual, antes de devolverlos a las jaulas con el resto de su grupo.

Análisis de imágenes. El archivo de datos de cada adquisición es reconstruido por el software que proporciona la casa comercial del aparato, mediante un algoritmo MLEM de 12 iteraciones en el cual se hace una corrección por decaimiento (puesto que la FDG tiene una vida media de 109,8min). No se hizo corrección por coincidencias aleatorias, dispersión y atenuación.

Tras reconstruir el archivo de datos se genera un archivo de imagen «img.hdr», que se utiliza para cuantificar las regiones de interés o volúmenes de interés (VOI). En nuestro estudio se ha analizado el volumen cerebral de cada rata por completo, por lo que se realizó un VOI en el cual quedaba excluida la parte correspondiente al cerebelo y el resto de las regiones con hipercaptación de la cabeza, como las glándulas de Harder.

El VOI construido para cada cerebro es analizado mediante el software comercial PMOD 2.8 (2006, Suiza). La actividad cuantificada en cada uno de los VOI analizados es la suma de todos los eventos captados por cada uno de ellos en ese período de tiempo (20min) expresada en milicurios por unidad de volumen (cm3). Esta captación de FDG (standarized uptake value [SUV]) es corregida por la dosis inyectada y el peso del animal (g) mediante la siguiente fórmula:

Análisis estadístico de los resultados. Para el análisis estadístico de los resultados, primero se realizó un análisis de la varianza. La hipótesis nula fue aceptada para todos los valores de aquellos grupos en los cuales F no fue significativa para un valor p≤0,05. Luego, el grupo de datos para los que F fue significativa fueron analizados por el test de la t de Student. La simbología empleada en el presente trabajo es la siguiente: *p<0,05; **p<0,01; ***p<0,001.

En la figura 1 se muestra el consumo cerebral de glucosa in vivo de ratas jóvenes (4–7 meses) y V (22–24 meses) y, como se puede comprobar, este disminuye significativamente con la edad (3,9±1.43 vs. 1,99±1,66 SUV; p<0,05). El cerebro de las ratas jóvenes consume alrededor del doble de glucosa en comparación con las ratas V. Por tanto, el envejecimiento interfiere con el consumo cerebral de glucosa en las ratas.

Figura 1.

Consumo cerebral de glucosa in vivo en ratas jóvenes (4–7 meses) y viejas (22–24 meses). Imagen coronal del cerebro (intensidad expresada como «máxima captación por corte». Metabolismo cerebral de glucosa (18F-FDG) expresado como standarized uptake value (SUV). Valores expresados como media±SD (n=6). La diferencia estadística está expresada como *p<0,05 vs. control.

(0,12MB).

La figura 2 muestra el consumo cerebral de glucosa in vivo del grupo de ratas con OVX 3 y su disminución respecto al grupo Control (3,9±1,43 vs. 0,94±0,23 SUV; p<0,01). Así pues, la OVX disminuye el consumo cerebral de glucosa.

Figura 2.

Consumo cerebral de glucosa in vivo en ratas jóvenes (4–7 meses) y OVX 3. Imagen coronal del cerebro (intensidad expresada como «máxima captación por corte»). Metabolismo cerebral de glucosa (18F-FDG) expresado como standarized uptake value (SUV). Valores expresados como media±SD (n=6). La diferencia estadística está expresada como **p<0,01 vs. control.

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A continuación, cuando se compara el efecto de la OVX 3 con el grupo de ratas V y el de ratas Control se puede observar (fig. 3) cómo el consumo cerebral de glucosa in vivo está disminuido en el grupo de OVX 3 y de ratas V respecto al grupo control (3,9±1,43 y 0,94±0,23 SUV [p<0,01] vs. 1,99±1,66 SUV [p<0,05]). Así pues, la OVX ejerce un efecto similar al envejecimiento.

Figura 3.

Consumo cerebral de glucosa in vivo en ratas jóvenes (4–7 meses), OVX 3 y viejas (22–24 meses). Imagen coronal del cerebro (intensidad expresada como «máxima captación por corte»). Metabolismo cerebral de glucosa (18F-FDG) expresado como standarized uptake value (SUV). Valores expresados como media±SD (n=6). La diferencia estadística está expresada como **p<0,01; *p<0,05 vs. control.

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Con los anteriores resultados veíamos el efecto que producía la OVX, es decir, la inducción de la menopausia en ratas a corto plazo (3 semanas). Con los siguientes grupos (OVX 6) vemos que dicho efecto negativo sobre el consumo cerebral de glucosa in vivo se mantiene disminuido si este período de OVX se alarga en el tiempo (6 semanas [fig. 4]).

Figura 4.

Consumo cerebral de glucosa in vivo en ratas jóvenes (4–7 meses), ovariectomizadas durante 3 y 6 semanas (OVX 3 y OVX 6). Imagen coronal del cerebro (intensidad expresada como «máxima captación por corte»). Metabolismo cerebral de glucosa (18F-FDG) expresado como standarized uptake value. Valores expresados como media±SD (n=6). La diferencia estadística está expresada como **p<0,01; *p<0,05 vs. control.

(0,13MB).

En dichas gráficas observamos que esta disminución es consistente y representa un cambio significativo del grupo de OVX 6 respecto al grupo control (3,9±1,43 vs. 1,06±0,17 SUV; p<0,05), al igual que con el grupo de OVX 3 (3,9±1,43 vs. 0,94±0,23 SUV; p<0,01 con el grupo de OVX 6 (vs. 1,06±0,17 SUV; p<0,05); con el grupo de ratas V (vs. 1,99±1,66 SUV, p<0,05). Así pues, tras 6 semanas de OVX no se produce ninguna recuperación del consumo cerebral de glucosa, por tanto, no hay ninguna adaptación.

Desde hace más de 2 décadas se están llevando a cabo estudios en los que se analiza y se evalúa el consumo metabólico de glucosa a nivel fisiológico y/o fisiopatólogico con la técnica de PET28,29, sobre todo en los cambios que acontecen con el envejecimiento9–14.

Los equipos de PET han ido evolucionando y perfeccionándose cada vez más, tanto en su tecnología y programas informáticos como en la planificación de los estudios y el análisis de sus resultados. Sin embargo, hoy día se plantean aún dudas respecto a la metodología que se usa para extraer los resultados30,31, el manejo de los animales en dichos estudios32,33, etc.

Existen muchos estudios que relacionan el consumo cerebral de glucosa con diversas enfermedades relacionadas con el envejecimiento, especialmente la enfermedad de Alzheimer23–34.

Como publicó recientemente nuestro grupo, se da una correlación en el envejecimiento entre un mayor estrés oxidativo y una disminución en el consumo cerebral de glucosa17.

Nuestro objetivo en este estudio fue evaluar el consumo cerebral de glucosa en ratas Wistar entre jóvenes y V, para corroborar ese dato publicado en ratones de un modelo de envejecimiento acelerado. Pero también, analizar si la inducción de la menopausia en ratas mediante la OVX provocaba un descenso en el consumo cerebral de glucosa, puesto que son bastantes los estudios que abogan por el uso de estrógenos en mujeres posmenopáusicas para revertir el efecto negativo de la menopausia en el consumo cerebral de glucosa, especialmente relacionado con aquellas áreas afectadas en la enfermedad de Alzheimer35.

Como muestran nuestros resultados, en primer lugar hay un descenso con el envejecimiento sobre el consumo cerebral de glucosa en ratas hembra. Dato que confirma que el metabolismo cerebral se ve afectado con el envejecimiento no sólo en animales17, sino también en humanos22.

Además, se observa como la OVX de 3 y de 6 semanas en ratas hembra produce un descenso global en el consumo cerebral de glucosa, similar a las ratas V.

Estos datos parecen señalar la menopausia como un periodo crítico en el cambio que se produce en el metabolismo cerebral de las hembras.

Así, actualmente estamos realizando estudios para ver el efecto de la administración de estrógenos y su efecto sobre ratas ovariectomizadas, ya que se hacen necesarios estudios para analizar si se revierte el efecto de la menopausia, se relaciona con la longevidad, la aparición de enfermedades neurodegenerativas, tumores y otras patologías de alta prevalencia en el organismo envejecido.

El trabajo de los autores está financiado por el proyecto SAF 2004-03755 a José Viña y por la beca BES-2005-9599 a Raúl López Grueso.

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.