Buscar en
Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Toda la web
Inicio Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica Sensibilidad a antimicrobianos del estreptococo del grupo B de transmisión vert...
Información de la revista
Vol. 22. Núm. 5.
Páginas 286-291 (Mayo 2004)
Compartir
Compartir
Descargar PDF
Más opciones de artículo
Vol. 22. Núm. 5.
Páginas 286-291 (Mayo 2004)
Acceso a texto completo
Sensibilidad a antimicrobianos del estreptococo del grupo B de transmisión vertical. Estudio multicéntrico
Susceptibility of vertically transmitted Group B streptococci to antimicrobial agents. Multicenter study
Visitas
12859
Juan José Gonzáleza, Antonia Andreua,1
Autor para correspondencia
anandreu@vhebron.net

Correspondencia: Dra. A. Andreu-Domingo. Servicio de Microbiología. Hospital Vall d’Hebron. P.° Vall d’Hebron, 119-129. 08035 Barcelona. España.
, en representación del Grupo de Estudio de Infección Perinatal (Geip) de la Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica (Seimc) b
a Servicio de Microbiología. Hospital Vall d’Hebron. Barcelona
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Introducción

Estudiar el porcentaje de estreptococos del grupo B (EGB) resistentes a macrólidos y lincosamidas y valorar las alternativas profilácticas aplicables intraparto a las gestantes alérgicas a la penicilina y colonizadas por una cepa de EGB resistente a estos antibióticos.

Métodos

Estudio multicéntrico realizado con 131 cepas de EGB aisladas entre 1997-2002 de recién nacidos con sepsis precoz y 479 cepas obtenidas durante el 2002 de vagina o recto de gestantes.

Resultados

El 100% de los EGB fueron sensibles a penicilina, ampicilina, vancomicina, quinupristina/dalfopristina, levofloxacino y teicoplanina. La resistencia a eritromicina y azitromicina fue del 12,45%, a clindamicina del 11,80%, a josamicina del 11,31%, a telitromicina del 1,80% y a fosfomicina del 0,32%. Sesenta y nueve cepas mostraron un fenotipo de resistencia MLSB constitutivo, 4 MLSB inducible, tres un fenotipo M y tres fueron resistentes a clindamicina y sensibles a macrólidos. La concentración inhibitoria mínima (CIM) a eritromicina y azitromicina fue superior a 32 mg/l en más del 85% de los EGB MLSB constitutivos, entre 0,5 y 4 mg/l en los MLSB inducibles y de 4 mg/l en fenotipo M. Cincuenta y una cepas sensibles a telitromicina (todas ellas con fenotipo MLSB constitutivo) mostraron una inducción de resistencia a este antibiótico al enfrentarlas a eritromicina. No existieron diferencias significativas al comparar las resistencias entre EGB productores de sepsis neonatal y colonizantes, ni entre los procedentes de distintas zonas geográficas.

Conclusiones

La elevada tasa de resistencias a macrólidos y lincosamidas obliga a practicar estudio de sensibilidad a aquellos EGB que colonizan a gestantes alérgicas a la penicilina.

Palabras clave:
EGB
Resistencias a macrólidos
lincosamidas
Profilaxis
Introduction

To investigate the susceptibility of group B streptococci (GBS) to macrolides and lincosamides and assess alternatives for intrapartum chemoprophylaxis in women allergic to penicillin and colonized by a GBS strain resistant to these antibiotics.

Methods

Multicenter study performed with 131 strains isolated between 1997-2002 from newborns diagnosed with early-onset GBS disease and 479 strains collected in 2002 from the vagina or rectum of pregnant women.

Results

All the GBS (100%) were susceptible to penicillin, ampicillin, vancomycin, quinupristin/dalfopristin, levofloxacin and teicoplanin. Resistance rates were as follows: 12.45% to erythromycin and azithromycin, 11.80% to clindamycin, 11.31%, to josamycin, 1.80% to telithromycin and 0.32% to fosfomycin. Seventy-nine strains had a constitutive MLSB phenotype of resistance, 4 an inducible MLSB phenotype, 3 an M phenotype and 3 were resistant to clindamycin but susceptible to macrolides. The MIC for erythromycin and azithromycin was >32 mg/L in more than 85% of GBS strains with a constitutive MLSB phenotype, from 0.5 to 4 mg/L in those with an inducible MLSB, and 4 mg/L in those with phenotype M. Fifty-one telithromycin-sensitive strains (all with a constitutive MLSB phenotype) showed induced resistance to telithromycin when erythromycin was present. No significant differences in antimicrobial resistance were found between GBS strains producing invasive neonatal disease and maternal isolates, or among strains from different geographic areas.

Conclusions

The high rate of resistance to macrolides and lincosamides in our area makes susceptibility testing mandatory for GBS strains isolated from pregnant women allergic to penicillin.

Keywords:
GBS
Macrolide
lincosamide
resistance
Prophylaxis
El Texto completo está disponible en PDF
Bibliografía
[1.]
K.M. Zangwill, A. Schuchat, J.D. Wenger.
Group B streptococcal diseases in the United States, 1990: report from a multistate active surveillance system.
MMWR, 41 (1992), pp. 25-32
[2.]
C.J. Baker, M.S. Edwards.
Group B streptococcal infections.
Infectious Diseases of the fetus and newborn infant, pp. 742-811
[3.]
S.J. Schrag, S. Zywicki, M.M. Farley, A.L. Reingold, L.H. Harrison, L.B. Lefkowitz, et al.
Group B streptococcal disease in the era of intrapartum antibiotic prophylaxis.
N Engl J Med, 342 (2000), pp. 15-20
[4.]
A. Andreu, I. Sanfeliu, L.L. Viñas, M. Barranco, J. Bosch, E. Dopico, et al.
Declive de la incidencia de la sepsis perinatal por estreptococo del grupo B –Barcelona 1994-2001–. Relación con las políticas profilácticas.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 21 (2003), pp. 174-179
[5.]
M. De Cueto, M. Sánchez, A. Sanpedro, J. Miranda, A. Herruzo, M. Rosa-Fraile.
Timing of intrapartum ampicillin and prevention of vertical transmisión of group B streptococcus.
Obstet Gynecol, 91 (1998), pp. 112-114
[6.]
Centers for Disease Control and Prevention. Prevention of perinatal group B streptococcal disease: A public health perspective.
MMWR, 45 (1996), pp. 1-24
[7.]
S. Schrag, R. Gorwitz, K. Fultz-Butts, A. Schuchat.
Prevention of perinatal group B streptococcal disease. Revised guidelines from CDC.
MMWR, 51 (2002), pp. 1-22
[8.]
Sociedad Española de Ginecología y Obstetricía (SEGO), Sociedad Española de Neonatología. En: Cabero LL, Miranda J, Larraz J, Salcedo S, Omeñaca F, Andreu A, et al, editores. Recomendaciones para la prevención de la infección perinatal por estreptococo del grupo B.
Prog Obstet Ginecol, 41 (1998), pp. 431-435
[9.]
A. Andreu, M. De la Rosa, L. Cabero.
Justificación de una política de prevención de la enfermedad perinatal por estreptococo del grupo B. Recomendaciones.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 17 (1999), pp. 138-140
[10.]
Sociedad Española de Obstetricia y Ginecología (SEGO). Sociedad Española de Neonatología (SEN). Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica (SEIMC). Sociedad Española de Quimioterapia (SEQ). Sociedad Española de Medicina Familiar y Comunitaria (SEMFYC). Prevención de la infección perinatal por estreptococo del grupo B. Recomendaciones españolas revisadas.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 21 (2003), pp. 417-423
[11.]
National Committee for Clinical Laboratory Standards. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically.
Approved standard. M7-A5. Vol. 20,
[12.]
H. Seppälä, A. Nissinen, Q. Yu, P. Huovinen.
Three different phenotypes of erythromycin-resistant Streptococcus pyogenes in Finland.
J Antimicrob Chemother, 32 (1993), pp. 885-891
[13.]
P. Zhong, V.D. Shortridge.
The role of effluxe in macrolide resistance.
Drug Resist Update, 3 (2000), pp. 325-329
[14.]
C. Betriu, E. Culebras, M. Gómez, I. Rodríguez-Avial, B.A. Sánchez, M.C. Agreda, et al.
Erythromycin and clindamycin resistance and telithromycin susceptibility in Streptococcus agalactiae.
Antimicrob Agents Chemother, 47 (2003), pp. 1112-1114
[15.]
B. Aracil, M. Miñambres, J. Oteo, M. De la Rosa, J.L. Gómez-Garcés, I. Alós.
Susceptibility of strains of Streptococcus agalactiae to macrolides and lincosamides, phenotype patterns and resistance genes.
Clin Microbiol Infect, 8 (2002), pp. 745-748
[16.]
J.S. Azavedo, M. McGavin, C. Duncan, D.E. Low, A. McGeer.
Prevalence and mechanisms of macrolide resistance in invasive and noninvasive group B streptococcus isolates from Ontario, Canada.
Antimicrob Agents Chemother, 45 (2001), pp. 3504-3508
[17.]
F.Y.C. Lin, P.H. Azimi, L.E. Weisman, J.B. Philips III, J. Regan, P. Clark, et al.
Antibiotic susceptibility profiles for group B streptococci isolated from neonates, 1995-1998.
Clin Infect Dis, 31 (2000), pp. 76-79
[18.]
J.I. Andrews, D.J. Diekema, S.K. Hunter, P.R. Rhomberg, M.A. Pfaller, R.N. Jones, et al.
Group B streptococci causing neonatal bloodstream infection: Antimicrobial susceptibility and serotyping results from SENTRY centers in the Western Hemisphere.
Am J Obstet Gynecol, 183 (2000), pp. 859-862
[19.]
D.J. Farrell, I. Morrissey, S. Bakker, D. Felmingham.
Molecular characterization of macrolide resistance mechanisms among Streptococcus pneumoniae and Streptococcus pyogenes isolated from the PROTEKT 1999-2000 study.
J Antimicrob Chemother, 50 (2002), pp. 39-47
[20.]
B. Weisblum.
Macrolide Resistance.
Drug Resist Update, 1 (1998), pp. 29-41
[21.]
J.I. Alós, B. Aracil, J. Oteo, C. Torres, J.L. Gómez-Garcés.
The Spanish Group for the Study of Infection in the Primary Health Care Setting. High prevalence of erythromycin-resistant clindamycin/miocamycin-susceptible (M phenotype) Streptococcus pyogenes: Results of a Spanish multicentre study in 1998.
J Antimicrob Chemother, 45 (2000), pp. 605-609
[22.]
S. Kaieda, N. Okitsu, H. Yano, Y. Hosaka, R. Nakano, R. Okamoto, et al.
Induction of telithromycin resistance in Streptococcus pneumoniae.
J Antimicrob Chemother, 52 (2003), pp. 736-737
[23.]
S. Douthwaite.
Structure-activity relationships of ketolides vs. macrolides.
Clin Microbiol Infect, 7 (2001), pp. 11-17
[24.]
J. Mensa, E. García-Vázquez, J. Vila.
Macrólidos, cetólidos y estreptograminas.
Enferm Infecc Microb Clin, 21 (2003), pp. 200-208
[25.]
R. Leclercq.
Mechanisms of resistance to macrolides and lincosamides: Nature of the resistance elements and their clinical implications.
Clin Infect Dis, 34 (2002), pp. 482-492
[26.]
M. Liu, S. Douthwaite.
Activity of the ketolide telithromycin is refractory to erm monomethilation of bacterial rRNA.
Antimicrob Agents Chemother, 46 (2002), pp. 1629-1633
[27.]
R. Leclercq.
Safeguarding future antimicrobial options: Strategies to minimize resistance.
Clin Infect Dis, 7 (2001), pp. 18-23
[28.]
R.S. Kozlov, T.M. Bogdanovitch, P.C. Appelbaum, L. Ednie, L.S. Stratchounski, M.R. Jacobs, et al.
Antistreptococcal activity of telithromycin compared with seven other drugs in relation to macrolide resistance mechanism in Russia.
Antimicrob Agents Chemother, 46 (2002), pp. 2963-2968
[29.]
J. Jalava, J. Kataja, H. Seppälä, P. Huovinene.
In vitro activities of the ketolide telithromycin (HMR 3647) against erythromycin-resistant Streptococcus species.
Antimicrob Agents Chemother, 45 (2001), pp. 789-793
[30.]
K. Nagai, P.C. Appelbaum, T.A. Davies, L.M. Kelley, D.B. Hoellman, A.T. Andrasevic, et al.
Susceptibility to telithromycin in 1011 Streptococcus pyogenes isolates from 10 central and eastern european countries.
Antimicrob Agents Chemother, 46 (2002), pp. 546-549
[31.]
B. Bozdogan, L. Berrezouga, M.S. Kuo, D.A. Yurek, K.A. Farley, B.J. Stockman, et al.
A new resistance gene, linB, conferring resistance to lincosamides by nucleotidylation in Enterococcus faecium HM1025.
Antimicrob Agents Chemother, 43 (1999), pp. 925-929
[32.]
M. Bergeron, G. Montay.
The pharmacokinetics of quinupristin/dalfopristin in laboratory animals and in humans.
J Antimicrob Chemother, 39 (1997), pp. 129-138
[33.]
T. Bergan.
Pharmacokinetics of fosfomycin.
Rev Contemp Pharmacother, 6 (1995), pp. 55-62
[34.]
N. Ragni, C. Pivetta, F. Paccagnella, G. Foglia, G.P. Del Bono, P. Fontana.
Urinary tract infections in pregnancy. Fosfomycin trometamol single-dose treatment versus conventional therapy with pipemidic acid.
New trends in urinary tract infections, pp. 197-206
[35.]
K.G. Naber, F.N. Johnson.
The safety and tolerability of fosfomycin trometamol.
Rev Contemp Pharmacother, 6 (1995), pp. 63-70
[36.]
R. Davis, H.M. Bryson.
Levofloxacyn: A rewiew of its antibacterial activity, pharmacokinetics and therapeutic efficacy.
Drugs, 47 (1994), pp. 677-700
[37.]
M.T. Kenny, B. Strates.
Metabolism and pharmacokinetics of the antibiotic rifampin.
Drug Metab Rev, 12 (1981), pp. 159-218

Grupo de Estudio de Infección Perinatal: Pedro Alomar (Hospital Son Dureta, Palma Mallorca); María Antonia Blanco (Hospital Santa Cristina, Madrid); Ana Bordes (Hospital Gran Canarias Dr. Negrín, Las Palmas de Gran Canaria); Jordi Bosch (Hospital Clínic-Maternitat, Barcelona), Juana Cacho (Hospital Getafe, Madrid); Ana Cid (Hospital Costa, Burela, Lugo); Amparo Coira (Hospital Xeral-Calde, Lugo); Marina de Cueto (Hospital Virgen Macarena, Sevilla); Eva Dopico (Laboratorio Clínic l’Hospitalet, Barcelona); José María García-Arenzana (Hospital Donosti, Donosti); Alberto Gil y Ana Mazón (Ambulatorio General Solchaga, Pamplona); Concepción Gimeno (Hospital Clínico, Valencia); Celia Guardia (Clínic del Barcelonés Nord i Vallés Oriental, Badalona); Soledad Illescas (Hospital Virgen Altagracia Manzanares; Ciudad Real); Teresa Juncosa (Hospital Sant Joan de Déu, Esplugues de Llobregat); Josep Lite (Hospital Mutua de Terrassa, Terrassa); Rocío Martínez y Beatriz Orden (Centro Esp. Argüelles, Madrid); María Pilar Pérez (Hospital Río Ortega, Valladolid); Manuela Rebollo (Hospital Infanta Cristina, Badajoz); Manuel de la Rosa (Hospital Virgen Nieves, Granada); María Rodríguez (Hospital Arquitecto Marcide, Ferrol); Isabel Sanfeliu (UDIAT-Centre Diagnòstic, Coorporació Parc Taulí, Sabadell); Francisca Sanz (Hospital 12 Octubre, Madrid); Pilar Villanueva (Ambulatorio Nuestra Señora de Estíbaliz, Vitoria) y Lluís Viñas (Institut Dexeus, Barcelona)

Copyright © 2004. Elsevier España, S.L.. Todos los derechos reservados
Opciones de artículo
Herramientas
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos