Buscar en
Revista Española de Patología
Toda la web
Inicio Revista Española de Patología Fibromixoma plexiforme del antro gástrico: descripción de 2 casos y revisión ...
Información de la revista
Vol. 46. Núm. 2.
Páginas 93-100 (Abril - Junio 2013)
Compartir
Compartir
Descargar PDF
Más opciones de artículo
Visitas
5003
Vol. 46. Núm. 2.
Páginas 93-100 (Abril - Junio 2013)
Artículo breve
Acceso a texto completo
Fibromixoma plexiforme del antro gástrico: descripción de 2 casos y revisión de la literatura
Plexiform fibromyxoma of the gastric antrum: a report of 2 cases and a review of the literature
Visitas
5003
Ana M. Vallejo-Beníteza, Judith Suárez-Aguadob, Montserrat Mora-Cabezasa, Teresa Aramendib, Margarita Gimenob, José Salasc, Ricardo González-Cámporaa,
Autor para correspondencia
rcampora@us.es

Autor para correspondencia.
a Servicio de Anatomía Patológica, Hospital Universitario Virgen Macarena, Sevilla, España
b Servicio de Anatomía Patológica, Hospital Universitario Infanta Leonor, Madrid, España
c Servicio de Anatomía Patológica, Hospital Universitario Reina Sofía, Córdoba, España
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Resumen
Texto completo
Bibliografía
Descargar PDF
Estadísticas
Figuras (4)
Mostrar másMostrar menos
Tablas (3)
Tabla 1. Anticuerpos primarios utilizados, clones y casas suministradoras
Tabla 2. Características clínicas y morfológicas
Tabla 3. Lesiones mixoides
Mostrar másMostrar menos
Resumen

El tumor miofibroblástico angiomixoide plexiforme o fibromixoma plexiforme es una neoplasia mesenquimal benigna, rara, recientemente descrita, que afecta al antro gástrico. Histológicamente presenta crecimiento plexiforme y está compuesta por células fibro/miofibroblásticas en un estroma mixoide, variable, con marcada trama capilar. En el presente artículo llevamos a cabo una revisión de la literatura y aportamos 2 casos adicionales en pacientes jóvenes (36 y 46 años) que consultaron por molestias gástricas inespecíficas y hemorragia digestiva alta. Ambas lesiones estaban situadas en la submucosa y en la capa muscular propia y presentaban un patrón de crecimiento plexiforme. Las células tumorales eran fusiformes y se disponían en el seno de una matriz mixoide abundante. La vascularización estaba constituida por numerosos vasos de pared fina y pequeño calibre. Con las técnicas de inmunohistoquímica, las células tumorales fueron positivas para actina de músculo liso, vimentina, caldesmón y desmina (un caso) y negativas para CD117, DOG1, EMA, S100, β-catenina y CD34. El estudio molecular no detectó mutaciones en los genes KIT y PDGFRA, en ninguno de los 2 casos. Hasta la fecha (4 años y 8 meses), ninguno de los pacientes ha desarrollado recidivas ni metástasis.

El diagnóstico diferencial incluye una gran variedad de lesiones mixoides que pueden asentar o invadir la pared del estómago (GIST, tumor desmoide intraabdominal, pólipo fibroide inflamatorio, leiomioma-leiomiosarcoma, perineuroma, schwannoma y neurofibroma), pero solo el neurofibroma plexiforme comparte su característico patrón de crecimiento.

Aunque en la revisión de la literatura hemos encontrado un total de 23 casos bajo la denominación de tumor gástrico miofibroblástico angiomixoide plexiforme o fibromixoma plexiforme, también hemos advertido que antes de la introducción de estos términos se habían descrito lesiones gástricas mixoides semejantes, no muy bien caracterizadas, que comparten mayoritariamente la localización antral gástrica, por lo que cabría especular sobre la posible existencia de una misma entidad con variable grado de diferenciación fibro/miofibroblástica y de patrón plexiforme, desarrollada probablemente en una población celular limitada exclusivamente al estómago.

Palabras clave:
Mixoma
Fibromixoma
Estómago
Antro
Tumores del estroma gastrointestinal
Abstract

Plexiform, angiomyxoid myofibrobastic tumour, or plexiform fibromyoma, is a rare, recently described, benign neoplasm that affects the gastric antrum. Histologically the tumour has a plexiform growth pattern and is composed of fibro/myofibroblastic cells in a variable mixed stroma with a prominent capillary network. We have reviewed the literature and present 2 further cases occurring in young patients (36 and 46 years of age) who presented with gastric discomfort and upper gastrointestinal bleeding. Both lesions were located in the submucosa and muscularis and showed a plexiform growth pattern. Fusiform cells were found in an abundant myxoid extracellular matrix. Numerous small fine-walled blood vessels were present. Immunohistochemistry revealed positivity for smooth muscle actin, vimentin, h-caldesmon and desmin (in one case) and negativity for CD117, DOG1, EMA, S100, β-catenin and CD34. Molecular studies showed no mutations in the KIT and PDGFRA genes in either case. To date, neither of the patients has recurrences or metastases, 4 years and 8 months after diagnosis.

Differential diagnosis includes a wide variety of myxoid lesions that may arise in or invade the stomach wall (GIST, intraabdominal desmoid tumour, inflammatory fibroid polyp, leiomyoma-leiomyosarcoma, perineuroma, schwannoma and neurofibroma), among these, plexiform neurofibroma is the only one showing the characteristic growth pattern.

In our review of the literature, we found 23 cases described as gastric plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumour, or gastric plexiform fibromyxoma. However, before the introduction of these terms, similar, if not completely characterized, gastric myxoid lesions had been described in the gastric antrum, suggesting that a single entity with a variable degree of fibro/myofibroblastic differentiation and a plexiform growth pattern might exist, perhaps developing in cells found only in the stomach.

Keywords:
Myxoma
Fibromyxoma
Stomach
Antrum
Gastrointestinal stromal tumours
Texto completo
Introducción

Aunque la mayoría (95%) de las neoplasias mesenquimales gastrointestinales corresponden a tumores del estroma gastrointestinal (GIST) y de músculo liso, también se han descrito una gran variedad de otros tipos tumorales con muy baja incidencia, tales como schwannoma, tumor desmoide, tumor fibroso solitario, pólipo fibroide inflamatorio, tumor miofibroblástico inflamatorio, etc.1–3. El principal problema diagnóstico que presentan estas lesiones inusuales es su fácil confusión con determinados cuadros morfológicos de GIST, y especialmente con los GIST CD117-negativos y sin mutaciones en los genes KIT o PDGFRA (wtKIT/PDGFRA).

Recientemente se ha llamado la atención sobre una forma peculiar de neoplasia gástrica mesenquimal, de curso clínico benigno, diferenciación fibro/miofibroblástica y patrón de crecimiento plexiforme, que ha sido denominada con los términos descriptivos de tumor miofibroblástico angiomixoide plexiforme4 y fibromixoma plexiforme5. En el presente artículo describimos 2 nuevos casos de esta entidad y llevamos a cabo una revisión de la literatura sobre neoplasias mesenquimales mixoides del estómago.

Material y métodoCaso 1

Varón de 36 años que consultó por pirosis. En la endoscopia gástrica se identificó una neoplasia submucosa situada en el antro que no ulceraba la superficie. En la TAC la tumoración se situaba en el espesor de la pared gástrica antral, tenía 6cm de diámetro máximo y protruía hacia la luz del estómago. El paciente fue intervenido con el diagnóstico de sospecha de GIST y se llevó a cabo una gastrectomía parcial. En la pieza quirúrgica la tumoración medía 6×3,5cm de diámetro, estaba recubierta por mucosa gástrica intacta y, al corte, tenía coloración blanquecina y consistencia firme.

Caso 2

Mujer de 46 años con hemorragia digestiva asociada a toma de AINE. En la gastroscopia se observaron 2 ulceraciones sobre una posible lesión submucosa antral. En el estudio de la TAC se confirmó la presencia de una masa neoplásica gástrica ulcerada (fig. 1). Se procedió a su extirpación mediante antrectomía. En la pieza quirúrgica se observó una zona ligeramente sobreelevada, con pequeñas ulceraciones de bordes netos, que, al corte, mostró un nódulo de 2,5×2cm, mal delimitado y de aspecto mixoide, situado en la submucosa.

Figura 1.

Neoplasia ulcerada de 3,5cm en la pared anterior gástrica.

(0,15MB).

Las piezas quirúrgicas fueron rutinariamente fijadas en formol e incluidas en parafina. Se realizaron cortes de 4μm que fueron teñidos con hematoxilina-eosina, azul alcián y se empleó la técnica de inmunohistoquímica con el sistema automatizado de tinción Ventana BenchMark XT (Roche) y EnVision™ (DAKO). En la tabla 1 aparecen recogidos los anticuerpos primarios utilizados, con sus clones y casas suministradoras correspondientes.

Tabla 1.

Anticuerpos primarios utilizados, clones y casas suministradoras

Anticuerpo  Caso n.° 1Caso n.° 2
  Clona  Casa comercial  Clona  Casa 
Actina músculo liso  1A-4  Roche  HHF35  Dako 
Vimentina  V9  Roche  Vim 3B4  Dako 
Caldesmón  h-CALD  Diagnostic Byo System  h-CD  Dako 
Desmina  D33  Diagnostic Byo System  D33  Dako 
B-catenina  14  Roche  B-Catenin-1  Dako 
CD34  QBEnd/10  Roche  QBEnd/10  Dako 
EMA  E29  Roche  E29  Dako 
S-100  Policlonal  Roche  Policlonal  Dako 
CKIT/CD117  Policlonal  Roche  Policlonal  Dako 
DOG1  SP31  Thermo Scientific  –  Dako 

En ambos casos el cuadro histológico fue totalmente superponible. Se trataba de una lesión mesenquimal plexiforme con marcada tendencia a crecer entre los haces musculares (fig. 2). Las células proliferantes eran fusiformes, con escaso citoplasma eosinófilo y núcleo oval, y se encontraban inmersas en un estroma rico en matriz mixoide azul alcian-positivo (fig. 3). No se identificó atipia nuclear manifiesta, focos de necrosis ni actividad mitótica significativa. La vascularización estaba constituida por pequeños vasos capilares. En algunos territorios existían discretas variaciones de este patrón fundamental, incluyendo aumento de matriz colágena, celularidad poligonal e, incluso, discreta hipercelularidad. Con las técnicas de inmunohistoquímica, las células presentaban inmunorreacción positiva a la actina de músculo liso, vimentina, caldesmón y desmina (focal, en el segundo caso) y negativa a CD117, DOG1, CD34, EMA, S100 y β-catenina (fig. 4). La inmunorreacción al CD34 puso de manifiesto exclusivamente la trama capilar vascular. Se emitió el diagnóstico de fibromixoma plexiforme (tumor miofibroblástico plexiforme angiomixoide). El estudio molecular realizado en ambas lesiones no mostró alteración en los exones 9, 11, 13,17 del gen KIT ni en los exones 12 y 18 del gen PDGFRA. Tras la intervención ambos pacientes se encuentran libres de enfermedad (4 años y 8 meses, respectivamente).

Figura 2.

Imagen histológica del tumor. El tumor presenta un patrón de crecimiento plexiforme (40×).

(0,58MB).
Figura 3.

Las células tumorales son fusiformes y se disponen en el seno de una matriz mixoide (200×).

(0,48MB).
Figura 4.

Resultados del estudio inmunohistoquímico. Las células tumorales expresan AML (izquierda) y caldesmón (derecha) (200×).

(0,8MB).
Discusión

En 2007, Takahashi et al.4 introdujeron el término descriptivo de tumor miofibroblástico plexiforme angiomixoide para señalar una lesión mesenquimal gástrica benigna, situada en el antro y con posible extensión al bulbo duodenal, que presentaba como hallazgos fundamentales las características histológicas referidas. A partir de esta descripción inicial de 2 casos comenzaron a aparecer en la literatura publicaciones de lesiones morfológicamente superponibles6–13. En la tabla 2 se recogen las características clínicas y morfológicas más significativas de todos los casos publicados hasta la fecha. Son neoplasias propias de adultos de edad media (42,7 años; rango 7-75 años), sin distinción sexual, que asientan en el antro. Aunque la presentación clínica es muy heterogénea, la mayoría consultaron por hematemesis. Dos casos fueron hallazgos incidentales, uno de ellos a propósito de una colecistectomía. Todas las lesiones se localizaban en la submucosa y muscular propia con diámetro máximo medio de 5,9cm (1,9-15cm). Aunque en algunas lesiones5,6,11 se describen nódulos únicos o múltiples en la serosa, en ninguna se señala extensión o diseminación al peritoneo o epiplón. Es de señalar que hasta la fecha no se han descrito tumores de similares características en ninguna otra localización del tracto gastrointestinal, por lo que se ha sugerido un posible origen en una población celular limitada exclusivamente al estómago5. La mucosa gástrica adyacente a la tumoración estaba ulcerada en 17 casos. Morfológicamente, en todos los casos había buena delimitación, aunque con bordes imprecisos, y estaba compuesta por múltiples nódulos dispuestos en un patrón plexiforme. Es de destacar que los nódulos subserosos carecen de patrón plexiforme y muestran bordes con crecimiento expansivo. Los nódulos eran irregulares en tamaño y forma, y contenían escasas células fusiformes, abundante matriz mixoide y trama capilar prominente. En 4 casos se observó invasión intravascular, lo que sugiere que el tumor puede utilizar los vasos como una vía de diseminación dentro de la pared gástrica5. Las células proliferantes eran fusiformes con citoplasma eosinófilo y núcleo oval con discreta hipercromasia. Las figuras de mitosis estaban ausentes o eran muy poco frecuentes (<4/50CGA) y no existían focos de necrosis. Con las técnicas inmunohistoquímicas, las células expresaban actina de músculo liso (18/20, 90%), actina muscular específica (6/6, 100%), vimentina (1/1, 100%), y de modo focal caldesmón (4/4, 100%), calponina (2/2, 100%), desmina (14/17, 82.3%), CD10 (1/5, 20%) y receptor de progesterona (1/2, 50%)11. En todos los casos en que se estudió la expresión de CD117, CD34, DOG-1, S-100, PDGFRA, antígeno de membrana epitelial, β-catenina, ALK, neurofilamentos, NSE, citoqueratina, citoqueratina AE1-AE3, BCL-2, colágeno tipoIV, laminina y receptor de estrógenos, la inmunorreacción fue negativa. El índice de proliferación con el anticuerpo Ki-67 fue inferior al 2%. En algunos tumores se describen hallazgos adicionales, tales como depósitos de colágeno, especialmente en el centro de lo nódulos; mastocitos dispersos en el estroma; escasa infiltración de linfocitos, células plasmáticas y eosinófilos y células de bordes despuntados, con delgadas extensiones citoplásmicas eosinófilas, que recuerdan a las células de músculo liso.

Tabla 2.

Características clínicas y morfológicas

Autor  Edad/Sexo  Presentación  Localización/Úlcera  Tamaño tumoral (cm)  Mitosis/50 CGA  Tipo de cirugía  Evolución 
Takahashi et al., 200750/H  Dolor abdominal por úlcera gástrica perforada  Antro, pared anterior/Sí  4×4×2,5  Gastrectomía distal  Datos no disponibles 
68/H  Incidental (laparoscopia)  Antro pilórico/No  4,5×3,5×Gastrectomía parcial  1 año LDE 
Rau et al., 2008  50/M  Náuseas matutinas  Antro/Sí  1,9×1,8×0,8  Resección en cuña  3 meses LDE 
Galant et al., 2008  61/H  Hematemesis  Antro/Sí  3,7  Gastrectomía distal  3 meses LDE 
Yoshida et al., 200846/H  HDA  Antro/Sí  3.5  < 1  Gastrectomía distal  4 meses LDE 
19/M  Tumoración gástrica  Antro/No  4,5×3,5×Gastrectomía distal  9 meses LDE 
Miettinem et al., 200938/M  HDA por úlcera gástrica  Antro, curvatura menor/Sí  3×Gastrectomía distal  Perdido 
62/H  Pérdida de peso  Antro pilórico/No  4×Gastrectomía parcial  Perdido 
75/M  Sin datos  Antro/Sí  Gastrectomía subtotal  Defuncióna2 meses 
65/M  Pérdida de peso, úlcera gástrica  Antro: curvatura menor, bulbo duodenal/Sí  5×4,5×2,5  Gastrectomía parcial  Defuncióna14,5 años 
33/H  Anemia, debilidad  Antro, pared anterior/Sí  5,5×3,5×3,5  Gastrectomía distal 50%  19,7 años LDE 
43/H  Hemorragia gastrointestinal  Antro, cerca del píloro/Sí  5,5×4,5×4,5  Gastrectomía parcial  18,4 años LDE 
56/M  Sin datos  Píloro, bulbo duodenal/No  5,5×Gastrectomía parcial  19,9 años LDE 
50/H  Obstrucción gástrica  Antro, bulbo duodenal/No  7×6×Gastrectomía distal  Defuncióna25,5 años 
21/H  Anemia, síncope  Antro prepilórico, bulbo duodenal/Sí  9×6×Antrectomía  22 años VSD 
16/M  Hematemesis  Antro pilórico/Sí  10×9×Gastrectomía distal  3 años VSD 
30/M  Ulcera gástrica  Antro/Sí  10×9×  Gastrectomía distal  9 años LDE y 24 años VSD 
7/M  Vómitos, diarrea, masa abdominal  Antro pilórico, bulbo duodenal/No  15×11×Extirpación del tumor  Perdido 
Pailoor et al., 2009  23/M  Heces oscuras  Antro/Sí  8,4×Gastrectomía parcial  No especificado 
Tan et al., 2010  34/H  Molestia abdominal, masa abdominal  Distal/Sí  3,5×3,4  Gastrectomía distal  2 meses LDE 
Takahashi et al., 2010  23/H  Dolor abdominal y melenas  Antro, bulbo duodenal/Sí  14×14×Gastrectomía parcial  12 meses LDE 
Sing et al., 2010  35/M  Incidental  Región píloroantral/No  4×3×< 1  Extirpación del tumor  12 meses LDE 
Kim et al., 2011  52/H  Dispepsia, tumoración gástrica  Antro/Sí  3,5×2,3  Resección en cuña  5 meses LDE 
Vallejo et al., 201236/H  Pirosis  Antro/No  6×3,5  Gastrectomía parcial  4 años LDE 
46/M  HDA por úlcera gástrica  Antro/Sí  2,5×Antrectomía  8 meses LDE 

LDE: libre de enfermedad; HDA: hemorragia digestiva alta; VSD: vive, status de la enfermedad desconocido.

a

Por causas desconocidas.

Teniendo en cuenta estas características morfológicas y biológicas, esta lesión se ha considerado como una neoplasia benigna de estirpe fibro/miofibroblástica, pero existen discrepancias acerca del término más apropiado para su denominación. Miettinen et al.5, teniendo en cuenta la variabilidad en el contenido de matriz mixoide, prefieren el término alternativo de fibromixoma plexiforme. En nuestros casos, aunque predominaban las áreas mixoides, también encontramos nódulos con depósito de cantidades notables de colágeno, por lo que consideramos esta última denominación como más idónea.

En la literatura previa a la publicación de Takahashi et al.4 hemos encontrado varias publicaciones14–21 y comentarios22 sobre la existencia de mixomas, fibromixomas y fibroangiomixomas en la pared del estómago, con comportamiento biológico benigno, sin que se especifique un patrón de crecimiento plexiforme. No obstante, la escasa precisión en las descripciones histológicas, conjuntamente con la ausencia de estudios inmunohistoquímicos o ultraestructurales completos y moleculares, no permiten descartar definitivamente un GIST mixoide ni afirmar que estemos ante el mismo tipo lesional; no obstante, es de destacar que la gran mayoría de estas lesiones mixoides compartían la misma localización gástrica antral (tabla 3), por lo que se podría especular que se podría tratar de la misma entidad con variable grado de diferenciación fibro/miofibroblástica y patrón plexiforme. La serie de lesiones mixoides más extensa es la aportada por Palmer17, que describe 6 lesiones gástricas, pero dada la escasez de datos histológicos, no podemos confirmar que estemos ante casos semejantes a la entidad que nos estamos refiriendo.

Tabla 3.

Lesiones mixoides

Autor  Edad/Sexo  Presentación  Localización/Úlcera  Tamaño tumoral (cm)  Mitosis  Tipo de cirugía 
Palmer et al. (1951) 6 casos  45-63/5H:1M  Dolor abdominal, dispepsia  2: Antro 1: Cuerpo 1: Fundus 2: No consta/Sí, en el 50% casos  Entre 3,1 a 10  No consignadas  Extirpación no especificada 
Carpanelli et al. (1959)  29/M  Hematemesis, melenas, dispepsia  Antro pilórico/No  «Tamaño de un puño»  No consignadas  Gastrectomía subtotal 
Rossi (1960)  55/H  Dispepsia  Antro pilórico  3,5  Desconocido  Resección parcial 
Shockman et al (1965)  45/M  Dolor abdominal  Antro: curvatura mayor  3×2,5×No establecidas  Extirpación no especificada 
Hull et al. (1982)  65/M  Dolor epigástrico  Antro/Sí  2,5×1,5×Ninguna  Extirpación no especificada 
Strat et al. (1986)  53/M  Melenas, hematemesis  Antro: curvatura menor  No establecidas  Gastrectomía distal 
Jagirdar et al. (1987)  64/M  Dolor epigástrico  Antro: curvatura mayor/Sí  8×7×No establecidas  Hemigastrectomía 
Fukunaga (2004)  78/H  Dolor abdominal  Antro: curvadura mayor  27×17×Ninguna  Gastrectomía parcial 

El diagnóstico diferencial del fibromixoma plexiforme hay que establecerlo principalmente con otras lesiones mesenquimales primarias de la pared gástrica que puedan contener matriz mixoide, tales como: GIST, tumor desmoide intraabdominal, pólipo fibroide inflamatorio, leiomioma-leiomiosarcoma, perineuroma, schwannoma y neurofibroma2,3. En la diferenciación de estas lesiones hay que tener en consideración 3 aspectos: patrón de crecimiento plexiforme, celularidad e inmunofenotipo. En la pared del estómago, el patrón de crecimiento plexiforme se describe también en el tumor glómico y en el neurofibroma plexiforme. El tumor glómico se diferencia del fibromixoma plexiforme por carecer de matriz mixoide y estar compuesto por células poligonales, dispuestas en grupos, que expresan actina de músculo liso23. Los neurofibromas plexiformes en el tubo digestivo generalmente se observan en el contexto de una neurofibromatosis tipo I y están compuestos por células de Schwann (S100-positivas), fibroblastos (CD34-positivas) y, en menor medida, por células perineurales (EMA-positivas) en el seno de una matriz abundante mixoide o mixo-colágena24. Las otras neoplasias señaladas pueden presentar matriz mixoide pero carecen de patrón plexiforme propiamente dicho, y su perfil inmunohistoquímico es diferente. Los GIST pueden presentar crecimiento multinodular, estar compuestos por células fusiformes, poligonales o de ambos tipos, y expresan inmunorreacción al CD117 y/o DOG-1 o bien presentan mutaciones en el gen KIT o PDGFRA1. El pólipo fibroide inflamatorio está compuesto por células fusiformes que tienden a disponerse concéntricamente alrededor de los vasos que muestran inmunorreacción positiva al CD34 y mutaciones en los exones 12 y 18 del gen PDGFRA25; además contienen abundante infiltrado inflamatorio linfocitario y eosinofílico. Los leiomiomas y leiomiosarcomas mixoides en el tubo digestivo son excepcionales y, a diferencia de los fibromixomas plexiformes, las células se disponen en fascículos, tienen núcleos elongados con extremos romos y citoplasma eosinófilo y fibrilar, y expresan actina de músculo liso y desmina26,27. El tumor desmoide abdominal se desarrolla en el mesenterio y secundariamente infiltra la pared del tubo digestivo, y aunque estas lesiones pueden tener matriz mixoide, presentan crecimiento infiltrativo, marcada tendencia a la recidiva y las células expresan actina de músculo liso y β-catenina28,29. Por último, el tumor miofibroblástico inflamatorio también se desarrolla en la cavidad abdominal y secundariamente afecta la pared del tubo digestivo. Aunque en algunas lesiones la matriz mixoide puede ser acusada y las células tumorales presentan inmunorreacción positiva a la actina de músculo liso, tienen mayor grado de atipia nuclear y con frecuencia expresan inmunorreacción positiva al ALK30; además, generalmente se presentan en gente joven.

En resumen, aunque en los casos que presentamos predominan las áreas mixoides, también existen territorios con mayor depósito de colágeno, por lo que consideramos que el término más apropiado es el de fibromixoma plexiforme. Con independencia del término utilizado, estas lesiones se caracterizan por asentar en el antro gástrico, presentar crecimiento plexiforme y estar compuestas por células fibro/miofibroblásticas con estroma mixoide variable y marcada trama capilar. Probablemente, algunas de las lesiones previamente descritas bajo los términos de mixoma, fibromixoma y angiomixoma gástricos representan la misma entidad, ya que tienen preferencia por el antro gástrico.

Responsabilidades éticasProtección de personas y animales

Los autores declaran que para esta investigación no se han realizado experimentos en seres humanos ni en animales.

Confidencialidad de los datos

Los autores declaran que en este artículo no aparecen datos de pacientes.

Derecho a la privacidad y consentimiento informado

Los autores declaran que en este artículo no aparecen datos de pacientes.

Conflicto de intereses

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Bibliografía
[1]
M. Miettinem, C.D.M. Fletcher, L.G. Kindblom, W.M.S. Tsui.
Mesenchymal tumours of the stomach.
WHO Classification of Tumours of the Digestive System, 4th ed., pp. 62-65
[2]
N. Dow, G. Giblen, L.H. Sobin, M. Miettinen.
Gastrointestinal stromal tumors: differential diagnosis.
Semin Diagn Pathol, 23 (2006), pp. 111-119
[3]
M. Miettinen, J. Lasota.
Gastrointestinal stromal tumors—definition, clinical, histological, immunohistochemical, and molecular genetic features and differential diagnosis.
Virchows Arch, 438 (2001), pp. 1-12
[4]
Y. Takahashi, S. Shimizu, T. Ishida, K. Aita, S. Toida, T. Fukusato, et al.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor of the stomach.
Am J Surg Pathol, 31 (2007), pp. 724-728
[5]
M. Miettinem, H.R. Makhlouf, L.H. Sobin, J. Lasota.
Plexiform fibromyxoma.
Am J Surg Pathol, 33 (2009), pp. 1624-1632
[6]
T.T. Rau, A. Hartmann, W. Dietmaier, J. Schmitz, W. Hohenberger, F. Hofstaedter, et al.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor of the stomach.
J Clin Pathol, 61 (2008), pp. 1136-1137
[7]
C. Galant, E. Rousseau, A. Ho Minh Duc, P. Pauwels.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor of the stomach.
Am J Surg Pathol, 32 (2008), pp. 1910
[8]
A. Yoshida, D.S. Klimstra, C.R. Antonescu.
Plexiform angiomyxoid tumor of the stomach.
Am J Surg Pathol, 32 (2008), pp. 1910-1912
[9]
J. Pailoor, K.S. Mun, C.T. Chen, B. Pillay.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumour of the stomach.
Pathology, 41 (2009), pp. 698-699
[10]
C.Y. Tan, L.D. Santos, A. Biankin.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor of the stomach: a case report.
Pathology, 42 (2010), pp. 581-583
[11]
Y. Sing, S. Subayan, B. Mqadi, P.K. Ramdial, J. Reddy, M.S. Moodley, et al.
Gastric plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor.
Pathol Int, 60 (2010), pp. 621-625
[12]
A. Kim, Y.K. Bae, H.C. Shin, J.H. Choi.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor of the stomach: a case report.
J Korean Med Sci, 26 (2011), pp. 1508-1511
[13]
Y. Takahashi, M. Suzuki, T. Fukusato.
Plexiform angiomyxoid myofibroblastic tumor of the stomach.
World J Gastroenterol, 16 (2010), pp. 2835-2840
[14]
J.B. Carpanelli, L. Sarra.
Gastric fibromyxoma.
Prensa Med Argent, 46 (1959), pp. 1049-1052
[15]
A.T. Shockman, J.H. Rosen.
Fibromyxoma of the stomach.
Del Med J, 37 (1965), pp. 225-228
[16]
J. Jagirdar, S. Kikman.
Fibromyxoma of the stomach.
Mt Sinai J Med, 54 (1987), pp. 341-343
[17]
E.D. Palmer.
Benign intramural tumors of the stomach: a review with special reference to gross pathology.
Medicine, 30 (1951), pp. 81-181
[18]
F. Rossi.
Contribution to the study of gastric myxoma.
Friuli Med, 15 (1960), pp. 619-630
[19]
V. Strat, M.R. Diaconescu, S. Georgescu, E. Popescu.
Gastric myxoma.
Rev Med Chir Soc Med Nat Iasi, 90 (1986), pp. 523-524
[20]
M.T. Hull, J.E. Jesseph.
Ultraestructure of gastric myxofibroma with intracytoplasmic collagen.
Ultraestruct Pathol, 3 (1982), pp. 25-30
[21]
M. Fukunaga.
Gastric fibromyxoma, a distinct entity of pure fibroblastic tumor—an ultraestructural study.
[22]
S.C. Ming.
Atlas of Tumor Pathology. Tumors of the Esophagus and Stomach.
2nd ed., AFIP, (1973),
[23]
M. Miettinen, J. Lasota.
Gastrointestinal stromal tumors (GISTs): definition, occurrence, pathology, differential diagnosis and molecular genetics.
Pol J Pathol, 54 (2003), pp. 3-24
[24]
J.A. Gibson, J.L. Hornick.
Mucosal Schwann cell «hamartoma». Clinicopathologic study of 26 neural colorectal polyps distinct from neurofibromas and mucosal neuromas.
Am J Surg Pathol, 33 (2009), pp. 781-787
[25]
H.R. Makhlouf, L.H. Sobin.
Inflammatory myofibroblastic tumors (inflammatory pseudotumors) if the gastrointestinal tract: how closely are they related to inflammatory fibroid polyps?.
Hum Pathol, 33 (2002), pp. 307-315
[26]
M. Miettinen, M. Sarlomo-Rikala, L.H. Sobin.
Mesenchymal tumors of the muscularis mucosae of colon and rectum are benign leiomyomas that should be separated from gastrointestinal stromal tumors: a clinicopathologic and immunohistochemical study of eighty-eight cases.
Mod Pathol, 14 (2001), pp. 950-956
[27]
M. Miettinen, M. Sarlomo-Rikala, L.H. Sobin, J. Lasota.
Esophageal stromal tumors: a clinicopathologic, immunohistochemical, and molecular genetic study of 17 cases and comparison with esophageal leiomyomas and leiomyosarcomas.
Am J Surg Pathol, 24 (2000), pp. 211-222
[28]
R.K. Yantiss, I.J. Spiro, C.C. Compton, A.E. Rosenberg.
Gastrointestinal stromal tumor versus intra-abdominal fibromatosis of the bowel wall: a clinically important differential diagnosis.
Am J Surg Pathol, 24 (2000), pp. 947-957
[29]
E. Montgomery, M.S. Torbenson, M. Kaushal, C. Fisher, S.C. Abraham.
Betacatenin Immunohistochemistry separates mesenteric fibromatosis from gastrointestinal stromal tumor and sclerosing mesenteritis.
Am J Surg Pathol, 26 (2002), pp. 1296-1301
[30]
B. Lawrence, A. Perez-Atayde, M.K. Hibbard, B.P. Rubin, P. Dal Cin, J.L. Pinkus, et al.
TPM3-ALK and TPM4-ALK oncogenes in inflammatory myofibroblastic tumors.
Am J Pathol, 157 (2000), pp. 377-384
Copyright © 2012. SEAP y SEC
Opciones de artículo
Herramientas
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos