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Vol. 28. Núm. S1.
Programa Externo de Control de Calidad SEIMC. Año 2008
Páginas 56-61 (Enero 2010)
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Diagnóstico de laboratorio de las meningitis linfocitarias
Laboratory diagnosis of lymphocytic meningitis
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José María Navarro María,??
Autor para correspondencia
josem.navarro.sspa@juntadeandalucia.es

Autor para correspondencia.
, Mercedes Pérez Ruiza, Diego Vicente Anzab
a Servicio de Microbiología, Hospital Universitario Virgen de las Nieves, Granada. Centro de Referencia de Meningitis y Encefalitis Víricas de Andalucía, Granada, España
b Servicio de Microbiología, Hospital Donostia, San Sebastián. CIBER Enfermedad Respiratoria CIBERES y Centro de Referencia de Enfermedad Meningocócica del País Vasco, San Sebastián, España
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Resumen

La mayoría de las meningitis linfocitarias, principalmente las de evolución aguda y benigna, están producidas por virus. Los más comúnmente implicados en nuestro medio son los enterovirus, virus del herpes simple, virus varicela-zóster y virus Toscana. Las técnicas de amplificación de ácidos nucleicos (TAAN) son el método de elección para el diagnóstico de las meningitis virales a partir de muestras de líquido cefalorraquídeo (LCR). Son más rápidas, más sensibles y, además, no están tan condicionadas por la viabilidad de los virus en la muestra clínica como lo están los métodos tradicionales. El desarrollo de equipos comerciales validados, el grado de automatización de la técnica, y el empleo de sistemas de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) en tiempo real son las principales premisas que hay que tener en cuenta a la hora de elegir el método en cada laboratorio. En la actualidad se encuentran disponibles equipos comerciales para la detección mediante PCR en tiempo real de enterovirus y herpesvirus, que son los virus implicados con mayor frecuencia. Aunque las TAAN a partir de una muestra directa han desplazado al cultivo celular con fines diagnósticos, la combinación de ambas tecnologías puede ser de gran utilidad. Cuando no es posible establecer el agente causal mediante TAAN en muestras de LCR, se debe recurrir al empleo de otras muestras (exudado faríngeo, heces) y otras técnicas, como la serología, que es el método de elección para el diagnóstico de meningitis por virus poco frecuentes en nuestro medio, como el virus de West Nile y el virus de la coriomeningitis linfocitaria.

Palabras clave:
Meningitis linfocitaria
Meningitis aséptica
Diagnóstico de laboratorio
PCR
Cultivo celular
Abstract

Lymphocytic meningitis, mainly those with an acute and benign course, are caused by viruses. In our area, the most commonly involved agents are enteroviruses, herpes simplex, varicella zoster and Toscana viruses. Nucleic acids amplification techniques (NAAT) are the methods of choice to diagnose viral meningitis from cerebrospinal fluid (CSF) samples. They are more rapid and sensitive, and indeed, they are not influenced by the viability of the virus in the clinical specimen as traditional methods are. The development of commercial equipments, the degree of automation, and the use of real-time polymerase chain reaction (PCR) systems are the most important premises to choose the molecular method in each laboratory. Recently, commercial kits of real-time PCR are available for the detection of enteroviruses and herpesviruses, which are the most frequently viruses involved in meningitis. Although NAAT from the clinical sample have replaced cell culture for diagnostic purposes, the combination of both methods remain useful. When the detection of the causal agent from the CSF sample is not possible, other specimens (pharyngeal exudates, stools) or serological methods can be used. Serology is the reference method for meningitis caused by West Nile virus and lymphocytic choriomeningitis virus, which are less frequently detected in our area.

Keywords:
Lymphocytic meningitis
Aseptic meningitis
Laboratory diagnosis
PCR
Cell culture
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Bibliografía
[1.]
J.R. Baringer.
Viral infections.
Diseases of the nervous system: clinical neurobiology, 2.ª ed., pp. 1298-1311
[2.]
J.M. Navarro, C. Fernández-Roldán, M. Pérez-Ruiz, S. Sanbonmatsu, M. de la Rosa, M.P. Sánchez-Seco.
Meningitis por virus Toscana en España: descripción de 17 casos.
Med Clin (Barc), 122 (2004), pp. 420-422
[3.]
M.A. Gutierrez Rodriguez, L. Garcia Comas, I. Rodero Garduño, C. Garcia Fernandez, M. Ordobas Gavin, R. Ramirez Fernandez, et al.
Increase in viral meningitis cases reported in the Autonomous Region of Madrid, Spain, 2006.
Euro Surveill, 11 (2006),
[4.]
R.L. Debiasi, K.L. Tyler.
Molecular methods for diagnosis of viral encephalitis.
Clin Microbiol Rev, 17 (2004), pp. 903-925
[5.]
F. Dubos, F. Moulin, V. Gajdos, N. de Suremain, S. Biscardi, P. Lebon, et al.
Serum procalcitonin and other biologic markers to distinguish between bacterial and aseptic meningitis.
J Pediatr, 149 (2006), pp. 72-76
[6.]
D.R. Chadwick.
Viral meningitis.
Br Med Bull, 75 (2005), pp. 1-14
[7.]
Boletín Epidemiológico Semanal. Centro Nacional de Epidemiología. Instituto de Salud Carlos III. Vigilancia de enterovirus no polio. Sistema de Información Microbiológica. Años 2006-2009. 2009 Vol. 17 n.?? 4/37-48. Disponible en: http://www.isciii.es/htdocs/centros/epidemiologia/boletin_semanal/BOLETIN_2009-04.pdf.
[8.]
J.F. Modlin.
Coxsackieviruses, echoviruses, and newer enteroviruses.
Principles and practice of infectious diseases, 6.ª ed., pp. 2148-2161
[9.]
G. Reina-González, M. Pérez-Ruiz, A. Avellón, G. Trallero, A. Otero, M. de la Rosa-Fraile, et al.
Enterovirus 75, un nuevo virus patógeno en nuestro medio.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 25 (2007), pp. 566-569
[10.]
C.B. Kost, B. Rogers, S. Oberste, C. Robinson, B.L. Eaves, K. Leos, et al.
Multicenter beta trial of the GeneXpert Enterovirus assay.
J Clin Microbiol, 45 (2007), pp. 1081-1086
[11.]
F.S. Nolte.
Case studies in cost effectiveness of molecular diagnostics for infectious diseases: pulmonary tuberculosis, enteroviral meningitis and BK virus nephropathy.
Clin Infect Dis, 43 (2006), pp. 1463-1467
[12.]
H.A. Rotbart, M.H. Sawyer, S. Fast, C. Lewinski, N. Murphy, E.F. Keyser, et al.
Diagnosis of enteroviral meningitis by using PCR with a colorimetric microwell detection assay.
J Clin Microbiol, 32 (1994), pp. 2590-2592
[13.]
I. Casas, F. Pozo, G. Trallero, J.M. Echevarría, A. Tenorio.
Viral diagnosis of neurological infection by RT multiplex PCR: a search for entero- and herpesviruses in a prospective study.
J Med Virol, 57 (1999), pp. 145-151
[14.]
M.L. Landry, R. Garner, D. Ferguson.
Real-time nucleic acid sequence-based amplification using molecular beacons for detection of enterovirus RNA in clinical specimens.
J Clin Microbiol, 43 (2005), pp. 3136-3139
[15.]
J. Petitjean, A. Vabret, J. Dina, S. Gouarin, F. Freymuth.
Development and evaluation of a real-time RT-PCR assay on the LightCycler for the rapid detection of enterovirus in cerebrospinal fluid specimens.
J Clin Virol, 35 (2006), pp. 278-284
[16.]
I. Steiner, P.G. Kennedy, A.R. Pachner.
The neurotropic herpes viruses: herpes simplex and varicella-zoster.
Lancet Neurol, 6 (2007), pp. 1015-1028
[17.]
G. Boivin.
Diagnosis of herpesvirus infections of the central nervous system.
Herpes, 11 (2004), pp. A48-A56
[18.]
M. Perez-Ruiz, X. Collao, J.M. Navarro-Mari, A. Tenorio.
Reverse transcription, realtime PCR assay for detection of Toscana virus.
J Clin Virol, 39 (2007), pp. 276-281
[19.]
M.P. Sanchez-Seco, J.M. Echevarria, L. Hernandez, D. Estevez, J.M. Navarro-Mari, A. Tenorio.
Detection and identification of Toscana and other phleboviruses by RT-nested-PCR assays with degenerated primers.
J Med Virol, 71 (2003), pp. 140-149
[20.]
M. Valassina, M.G. Cusi, P.E. Valensin.
Rapid identification of Toscana virus by nested PCR during an outbreak in the Siena area of Italy.
J Clin Microbiol, 34 (1996), pp. 2500-2502
[21.]
M. Weidmann, M.P. Sanchez-Seco, A.A. Sall, P.O. Ly, Y. Thiongane, M.M. Lô, et al.
Rapid detection of important human pathogenic phleboviruses.
J Clin Virol, 41 (2008), pp. 138-142
[22.]
S. Sanbonmatsu-Gamez, M. Perez-Ruiz, X. Collao, M.P. Sanchez-Seco, F. Morillas-Marquez, M. de la Rosa-Fraile, et al.
Toscana virus in Spain.
Emerg Infect Dis, 11 (2005), pp. 1701-1707
[23.]
G. Palacios, O. Jabado, D. Cisterna, F. de Ory, N. Renwick, J.E. Echevarria, et al.
Molecular identification of mumps virus genotypes from clinical samples: standardized method of analysis.
J Clin Microbiol, 43 (2005), pp. 1869-1878
[24.]
J.D. Boddicker, P.A. Rota, T. Kreman, A. Wangeman, L. Lowe, K.B. Hummel, et al.
Realtime reverse transcription-PCR assay for detection of mumps virus RNA in clinical specimens.
J Clin Microbiol, 45 (2007), pp. 2902-2908
[25.]
K. Uchida, M. Shinohara, S. Shimada, Y. Segawa, R. Doi, A. Gotoh, et al.
Rapid and sensitive detection of mumps virus RNA directly from clinical samples by realtime PCR.
J Med Virol, 75 (2005), pp. 470-474
[26.]
D. Kaptoul, P.F. Viladrich, C. Domingo, J. Niubo, S. Martinez-Yelamos, F. de Ory, et al.
West Nile virus in Spain: report of the first diagnosed case (in Spain) in a human with aseptic meningitis.
Scand J Infect Dis, 39 (2007), pp. 70-71
[27.]
K.C. Wolthers, K.S. Benschop, J. Schinkel, R. Molenkamp, R.M. Bergevoet, I.J. Spijkerman, et al.
Human parechoviruses as an important viral cause of sepsis-like illness and meningitis in young children.
Clin Infect Dis, 47 (2008), pp. 358-363
[28.]
R.N. Charrel, P. Gallian, J.M. Navarro-Mari, L. Nicoletti, A. Papa, M.P. Sanchez-Seco, et al.
Emergence of Toscana virus in Europe.
Emerg Infect Dis, 11 (2005), pp. 1657-1663
[29.]
T. Chonmaitree, C. Ford, C. Sanders, H.L. Lucia.
Comparison of cell cultures for rapid isolation of enteroviruses.
J Clin Microbiol, 26 (1988), pp. 2576-2580
[30.]
G.D. Hsiung.
Picornaviridae.
Hsiung's diagnostic virology: as illustrated by light and electron microscopy, 4.ª ed., pp. 119-140
[31.]
M.S. Oberste, K. Maher, D.R. Kilpatrick, M.R. Flemister, B.A. Brown, M.A. Pallansch.
Typing of human enteroviruses by partial sequencing of VP1.
J Clin Microbiol, 37 (1999), pp. 1288-1293
[32.]
I. Casas, G.F. Palacios, G. Trallero, D. Cisterna, M.C. Freire, A. Tenorio.
Molecular characterization of human enteroviruses in clinical samples: comparison between VP2, VP1, and RNA polymerase regions using RT nested PCR assays and direct sequencing of products.
J Med Virol, 65 (2001), pp. 138-148
[33.]
J.M. Echevarría, I. Casas, F. de Ory, A. Tenorio, C. Echevarría, A. Lozano.
Diagnóstico de laboratorio de encefalitis agudas y subagudas de probable origen viral: siete años de experiencia.
Neurología, 12 (1997), pp. 381-383
[34.]
M. Pérez-Ruiz, D. Vicente, J.M. Navarro-Marí.
Infecciones agudas del sistema nervioso central (meningitis y encefalitis) virales y bacterianas de origen autóctono.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 26 (2008), pp. S8-S14
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