Buscar en
Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Toda la web
Inicio Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica Evolución de la resistencia antimicrobiana en aislados clínicos de Pseudomonas...
Información de la revista
Vol. 38. Núm. 4.
Páginas 150-154 (Abril 2020)
Visitas
4015
Vol. 38. Núm. 4.
Páginas 150-154 (Abril 2020)
Original
Acceso a texto completo
Evolución de la resistencia antimicrobiana en aislados clínicos de Pseudomonas aeruginosa productores de infecciones invasivas en el sur de España
Evolution of the antimicrobial resistance rates in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa causing invasive infections in the south of Spain
Visitas
4015
Felipe Fernández-Cuencaa,b,c,d,
Autor para correspondencia
felipefc@us.es

Autor para correspondencia.
, Luis Martínez-Martínezd,e,f,g, Álvaro Pascuala,b,c,d, Grupo GRAM
a Unidad de Enfermedades Infecciosas, Microbiología y Medicina Preventiva, Hospital Universitario Virgen Macarena, Sevilla, España
b Departamento de Microbiología, Universidad de Sevilla, España
c Instituto de Biomedicina de Sevilla IBIS, Hospital Universitario Virgen Macarena/CSIC/Universidad de Sevilla, Sevilla, España
d Red Española de Investigación en Patología Infecciosa (REIPI RD16/0016), Instituto de Salud Carlos III, Madrid, España
e Unidad de Gestión Clínica de Microbiología, Hospital Universitario Reina Sofía, Córdoba, España
f Departamento de Microbiología, Universidad de Córdoba, España
g Instituto Maimónides de Investigación Biomédica de Córdoba (IMIBIC)/Hospital Universitario Reina Sofía/Universidad de Córdoba, Córdoba, España
Miembros del Grupo GRAM
Contenido relaccionado
Enferm Infecc Microbiol Clin. 2020;38:147-910.1016/j.eimc.2020.02.012
Rafael Cantón, María Isabel Morosini
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Resumen
Texto completo
Bibliografía
Descargar PDF
Estadísticas
Figuras (2)
Tablas (2)
Tabla 1. Distribución de las tasas de resistencia por año utilizando puntos de corte de EUCAST de 2019 y de las tasas de resistencia globales en función de los puntos de corte utilizados (EUCAST o CLSI) y de la inclusión o no de los aislados con sensibilidad intermedia
Tabla 2. Distribución de las tasas de resistencia antimicrobiana por tipo de muestra
Mostrar másMostrar menos
Resumen
Introducción

El objetivo de este estudio es conocer las tasas de resistencia antimicrobiana y la evolución de las mismas durante 2012-2017 en aislados de Pseudomonas aeruginosa causante de infección invasiva en el sur de España.

Métodos

Estudio retrospectivo de recogida de datos microbiológicos en 20 centros hospitalarios (14 de Andalucía, 5 de Extremadura y 1 de Ceuta) durante 2012-2017. Las principales variables de estudio fueron: sistema de antibiograma usado, interpretación (CLSI o EUCAST) y tasa o porcentaje de aislados resistentes.

Resultados

El sistema de antibiograma más utilizado fue MicroScan (58%). Los porcentajes de resistencia globales variaron entre el 25% (ciprofloxacino) y el 4% (colistina) usando EUCAST, y entre el 19% (ciprofloxacino e imipenem) y el 3% (amicacina) usando CLSI. Las tasas de resistencia se mantuvieron relativamente estables durante 2012-2017. El 14% de los aislados fueron MDR y el 7% XDR. Los aislados de muestras respiratorias presentaron mayores tasas de resistencia antimicrobiana, particularmente a ciprofloxacino y colistina, que los aislados de orina o sangre.

Conclusiones

Las tasas de resistencia antimicrobiana en P. aeruginosa no son demasiado elevadas en el sur de España. Las tasas de resistencia más elevadas se observan para ciprofloxacino, piperacilina/tazobactam y meropenem, siendo los antimicrobianos de mayor actividad colistina, tobramicina y amicacina. Las mayores tasas de resistencia se observan en aislados de muestras respiratorias. En general las tasas de resistencia se mantienen estables durante el periodo de estudio para la mayoría de los antimicrobianos evaluados.

Palabras clave:
Pseudomonas aeruginosa
Aislados invasivos
Resistencia antimicrobiana
España
Abstract
Introduction

The aim of this study was to determine the antimicrobial resistance rates and their evolution in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa causing invasive infections in the south of Spain between 2012 and 2017.

Methods

Retrospective study consisting of the collection of microbiological data from 20 hospitals (14 from Andalucía, 5 from Extremadura and 1 from Ceuta) between 2012 and 2017. The main variables studied were the antimicrobial susceptibility testing system used, interpretation criteria (CLSI or EUCAST) and the rate or percentage of resistant isolates.

Results

The most widely used antimicrobial susceptibility testing system was MicroScan (58%). The global resistance rates varied between 25% (ciprofloxacin) and 4% (colistin) using EUCAST, and between 19% (ciprofloxacin and imipenem) and 3% (amikacin) using CLSI. The antimicrobial resistance rates were relatively stable throughout the period 2012-2017. 14% of isolates were MDR and 7% were XDR. Respiratory isolates were more resistant, particularly to ciprofloxacin and colistin, than isolates from urine or blood.

Conclusions

The antimicrobial resistance rates in P. aeruginosa are not particularly high in the south of Spain. The highest resistance rates were observed with ciprofloxacin, piperacillin/tazobactam and meropenem, whereas the more active antimicrobials were colistin, tobramycin and amikacin. The highest resistance rates were seen in respiratory isolates. In general, the resistance rates remained stable during the study period for most of the antimicrobials studied.

Keywords:
Pseudomonas aeruginosa
Invasive isolates
Antimicrobial resistance
Spain
Texto completo
Introducción

Las infecciones nosocomiales constituyen un serio problema de salud mundial con importantes repercusiones económicas y sociales1,2. Pseudomonas aeruginosa es un patógeno oportunista capaz de producir un amplio espectro de infecciones, siendo las infecciones invasivas las de mayor relevancia clínica por asociarse con elevadas tasa de morbimortalidad3,4. Este patógeno se caracteriza por su elevada resistencia intrínseca a muchos anrtimicrobianos y por su capacidad para adquirir resistencia incluso a los de amplio espectro, como los carbapenémicos y las polimixinas5–8.

Entre las opciones terapéuticas en infecciones causadas por P. aeruginosa no multirresistente se incluyen betalactámicos (ej. piperacilina/tazobactam, ceftazidima, cefepima, imipenem, meropenem, aztreronam), fluoroquinolonas y aminoglucósidos. Sin embargo, en infecciones producidas por P. aeruginosa multirresistente las opciones terapéuticas pueden disminuir considerablemente, teniendo que utilizarse antimicrobianos que pueden presentar problemas de toxicidad, como colistina, o antimicrobianos más novedosos con los que existe menos experiencia, como ceftolozano/tazobactam y ceftazidima/avibactam9–13.

La elección de un tratamiento antimicrobiano empírico requiere conocer, entre otros factores, las tasas de sensibilidad o resistencias locales. Las tasas de resistencia antimicrobiana en esta especie son variables y dependen de factores geográficos (ej. tasas locales de resistencia) y microbiológicos (ej. clon y mecanismos de resistencia). En España existen muy pocos estudios que permitan conocer las tasas de resistencia a antimicrobianos en aislados de P. aeruginosa causante de infección invasiva14–18. El objetivo de este estudio es conocer i) las tasas de resistencia antimicrobiana global y por tipo de muestra en aislados de P. aeruginosa causante de infección invasiva en el sur de España, y ii) conocer cómo han evolucionado las tasas de resistencia antimicrobiana durante el período 2012-2017.

Material y métodos

Estudio retrospectivo descriptivo de recogida de datos demográficos y microbiológicos durante 2012-2017 en 20 centros hospitalarios: 14 de Andalucía, 5 de Extremadura y 1 de Ceuta. Se recogieron datos de los primeros 3 aislados por cada año y tipo de infección (bacteriemia, infección intraabdominal, ITU nosocomial y neumonía nosocomial). En los pacientes en los que se obtuvo más de un aislado por tipo de infección y año se incluyó solo el primer aislado. Las variables de estudio fueron: servicio, origen de las muestras, sistema de antibiograma usado, interpretación (CLSI o EUCAST) y tasa o porcentaje de aislados resistentes. Tanto las pruebas de identificación bacteriana como las de sensibilidad a estos antimicrobianos se realizaron en cada centro. Los antimicrobianos analizados fueron piperacilina/tazobactam, ceftazidima, cefepima, imipenem, meropenem, aztreonam, tobramicina, amicacina, ciprofloxacino y colistina. Para cada antimicrobiano se determinó la correspondiente categoría clínica según los puntos de corte de EUCAST de 2019 y de CLSI de 201919,20.

El análisis estadístico de las discrepancias entre las variables cualitativas se realizó utilizando el test de la Chi cuadrado, o el test de Fisher, si procedía. Se consideraron estadísticamente significativas las diferencias con valores de p<=0,05.

Resultados

La procedencia por tipo de Unidad o Servicio de los 1341 datos analizables fue la siguiente: unidades médicas (47%), unidades quirúrgicas (26%), UCI (22%), Urgencias (4%) y otros servicios (1%). Los aislados se obtuvieron de muestras del tracto respiratorio (27%), orina (25%), sangre (24%), abdominal (23%), y otras muestras (1%). Los sistemas de antibiograma utilizados fueron: MicroScan (58%), Vitek 2 (24%), Wider I (15%), Phoenix (2%), difusión con discos (0,7%) y difusión con tiras de gradiente (0,3%). El 52% de los resultados de sensibilidad se obtuvieron usando los puntos de corte de CLSI de 2019 y el 48% usando los puntos de corte propuestos por EUCAST en 2019. En la figura 1 se representan los porcentajes de resultados de sensibilidad por año y por puntos de corte utilizados (CLSI o EUCAST de 2019) y como puede apreciarse, a partir de 2014 se produce un aumento progresivo del número de centros que utilizan los puntos de corte de EUCAST a costa de una disminución de centros que utilizan puntos de corte del CLSI.

Figura 1.

Distribución anual del porcentaje de centros que utilizan CLSI o EUCAST.

(0,06MB).

Para analizar los porcentajes de resistencia se consideraron 2 grupos de aislados: aislados no sensibles (incluye a los aislados resistentes y a los aislados con sensibilidad intermedia) y aislados resistentes (se incluyen aislados resistentes pero no aislados con sensibilidad intermedia). Como se aprecia en la tabla 1, los porcentajes de resistencia globales de los aislados resistentes varió entre el 25% (ciprofloxacino) y el 4% (colistina), utilizando los puntos de corte propuestos por EUCAST en 2019, y entre el 19% (ciprofloxacino e imipenem) y el 3% (amicacina), utilizando los puntos de corte del CLSI de 2019 (tabla 1). En los aislados no sensibles, las tasas globales de resistencia variaron entre el 25% (ciprofloxacino) y el 4% (colistina) usando los puntos de corte de EUCAST de 2019, y entre el 28% (aztreonam) y el 6% (colistina) usando puntos de corte del CLSI de 2019 (tabla 1).

Tabla 1.

Distribución de las tasas de resistencia por año utilizando puntos de corte de EUCAST de 2019 y de las tasas de resistencia globales en función de los puntos de corte utilizados (EUCAST o CLSI) y de la inclusión o no de los aislados con sensibilidad intermedia

AntimicrobianoPorcentaje aislados resistentes (R) y no sensibles (I+R) por
Año (%R)Puntos de corte
            EUCASTCLSI
2012  2013  2014  2015  2016  2017  %Ra  %I+Rb  %Ra  %I+Rb 
Piperacilina/tazobactamc  19  21  20  22  21  16  19  19  10  18 
Ceftazidimac  13  16  17  17  21  15  17  17  11  15 
Cefepimac  17  17  17  16  18  17  17  17  14 
Aztreonamc  16  13  15  19  22  11  16  16  16  28 
Imipenemc  17  15  15  15  13  14  19  19  19  24 
Meropenem  12  11  14  11  10  15  20  15  20 
Tobramicinac 
Amicacina  13  12  13 
Ciprofloxacinoc  26  33  34  32  28  24  25  25  19  23 
Colistinac,d 
a

Aislados resistentes.

b

Aislados no sensibles: aislados resistentes (R) más aislados sensibles cuando se incrementa la exposición (I).

c

Antimicrobianos en los que no existe categoría I por EUCAST de 2019.

d

Antimicrobianos en los que no existe categoría I por CLSI de 2019.

De los antimicrobianos evaluados, los únicos con los que se observó diferencias estadísticamente significativas al comparar los porcentajes globales de aislados resistentes y los porcentajes globales de aislados no sensibles, considerando puntos de corte de EUCAST, fueron amicacina (9% aislados resistentes y 13% aislados no sensibles; p=0,004) y meropenem (15% aislados resistentes y 20% aislados no sensibles, p=0,004). Utilizando los puntos de corte del CLSI estos porcentajes fueron del 3% (aislados resistentes) y 7% (aislados no sensibles) para amicacina (p=0,004) y del 15% (aislados resistentes) y 20% (aislados no sensibles) para meropenem (p=0,004).

Como se aprecia en la tabla 2, durante el periodo 2012-2017 las tasas de resistencia se mantuvieron relativamente estables, excepto para aztreonam, que pasa de un 22% en 2016 a un 11% en 2017 (p=0,013), y en menor medida piperacilina/tazobactam (21% en 2016 y 16% en 2017; p=0,20) y ceftazidima (21% en 2016 y 15% en 2017; p=0,17).

Tabla 2.

Distribución de las tasas de resistencia antimicrobiana por tipo de muestra

Antimicrobiano  Porcentaje de aislados resistentes (%R) por tipo de muestra
  Orina* (24,5%)  Sangre* (24,0%)  Abdominal* (23,2%)  Respiratorio* (26,8%) 
Piperacilina/tazobactam  17  15  17  29 
Ceftazidima  12  12  16  26 
Cefepima  11  13  14  28 
Aztreonam  12  11  14  26 
Imipenem  10  12  15  21 
Meropenem  10  10  13 
Tobramicina 
Amicacina  12 
Ciprofloxacino  30  27  21  40 
Colistina  10 
*

No se incluyen el 1,5% de otras muestras.

Según los criterios de Magiorakos et al.21 no se observaron aislados panresistentes, mientras que el 14% de los aislados fueron multirresistentes (MDR) y el 7% extremadamente resistentes (XDR). Como se aprecia en la figura 2, el porcentaje de aislados MDR se incrementó ligeramente a partir de 2012, pasando de un 11% en 2012 a un 16% en 2017. Respecto a los aislados XDR también se observa un incremento, pero menos acentuado que en los aislados MDR, pasando de un 4% en 2013 a un 7% en 2017.

Figura 2.

Distribución anual de los porcentajes de aislados de P. aeruginosa MDR y XDR.

(0,05MB).

Los aislados obtenidos de muestras respiratorias presentaron mayor resistencia a los antimicrobianos evaluados, particularmente ciprofloxacino (40%), amicacina (12%) y colistina (10%), que los aislados obtenidos de otras muestras, como por ejemplo orina o sangre.

Discusión

Según los resultados del estudio EPINE de 2017 P. aeruginosa fue el segundo patógeno nosocomial (9,6%), junto con Staphylococcus aureus, después de Escherichia coli (15,6%)22. En los últimos años se ha observado un aumento importante, aunque variable, en las tasas de resistencia antimicrobianas de P. aeruginosa. Este hecho justifica la necesidad de conocer las tasas de resistencias locales a los antimicrobianos así como las tendencias o evolución de las mismas en el tiempo, con el objeto de poder establecer o diseñar estrategias terapéuticas, sobre todo las empíricas, adecuadas.

Los datos obtenidos en este estudio indican que las tasas globales de resistencia antimicrobiana en P. aeruginosa en la zona sur de España (Andalucía, Extremadura y Ceuta) no son muy elevadas en comparación a la descrita en otros estudios nacionales14–16 y que estas varían dependiendo del punto de corte clínico utilizado (EUCAST o CLSI), de los criterios de inclusión de los aislados (aislados resistentes o aislados resistentes más aislados con sensibilidad intermedia) y del origen de los aislados.

En los últimos años se está produciendo, sobre todo en Europa, una clara tendencia en el uso creciente de puntos de corte EUCAST23,24. La razón es clara pues son los puntos de corte oficiales de la agencia Europea de Medicamentos. Adicionalmente, muchos países de Europa han tenido una «orden» de sus ministerios para ello.

El punto de corte utilizado (EUCAST o CLSI) tuvo un efecto importante en la mayoría de las tasas globales de resistencia antimicrobiana. Para algunos antimicrobianos, como piperacilina/tazobactam, cefepima, amicacina y ciprofloxacino se obtuvieron mayores tasas de resistencias usando EUCAST que con CLSI, por lo que el criterio o los puntos de corte utilizados para interpretar las categorías clínicas es de especial relevancia por la gran trascendencia o repercusión clínica que puede tener.

Con independencia del punto de corte utilizado, la tasa de resistencia más elevada se observó con ciprofloxacino (25% EUCAST y 19% CLSI), mientras que los antimicrobianos más activos fueron colistina, tobramicina y amicacina, con tasas de resistencia inferiores al 10%. Estos resultados concuerdan con los obtenidos en estudios previos, como los obtenidos en un estudio nacional español realizado con aislados obtenidos durante 1998-2003 en el que las mayores tasas de resistencia se observaron con ciprofloxacino (28%), aztreonam (23%) y cefepima (20%), mientras que los antimicrobianos más activos fueron tobramicina (11%), amicacina (8%) y piperacilina/tazobactam (7%)14. Los datos obtenidos en estudios más recientes realizados en España indican una tendencia similar o muy parecida. En un estudio realizado en Córdoba con aislados de 2005-2010 se observó que las mayores tasas de resistencia se correspondían con ciprofloxacino (20%), gentamicina (16%) y cefepima (12%), siendo los antimicrobianos de mayor actividad tobramicina (5%), meropenem (7%), piperacilina/tazobactam (7%) y ceftazidima (7%)16. Resultados similares se obtuvieron en otro estudio realizado en Castellón con aislados de 2004-2008, en el que la mayor tasa de resistencia se obtuvo con ciprofloxacino (17%), mientras que los antimicrobianos más activos fueron amicacina (2%), piperacilina/tazobactam (6%) y meropenem (6%)15.

El cálculo de las tasas de resistencia antimicrobiana puede realizase considerando aislados no sensibles (aislados con sensibilidad intermedia y aislados resistentes). En nuestro estudio esta consideración tuvo un gran impacto sobre las tasas de resistencia de algunos antimicrobianos, particularmente cuando se aplican puntos de corte EUCAST, como se ha visto anteriormente, como por ejemplo meropenem (15% aislados resistentes vs. 20% aislados no sensibles) y amicacina (9% aislados resistentes vs. 13% aislados no sensibles). Recientemente EUCAST ha realizado unas modificaciones o recomendaciones en relación con los aislados con sensibilidad intermedia en el sentido de que estos aislados pueden ser considerados como sensibles en función de ciertos factores como por ejemplo la dosis de antimicrobiano o el foco de la infección, entre otros25. Este cambio implicará una disminución muy significativa en las tasas de resistencia de muchos antimicrobianos.

De forma global, durante el periodo de estudio (2012-2017) no se han observado cambios o tendencias importantes en las tasas de resistencia de la mayoría de los antimicrobianos evaluados, excepto para aztreonam, cuya tasa de resistencia en 2017 se reduce a la mitad (11%) respecto a 2016 (22%). Estos resultados sugieren que en los hospitales del sur de España no se están produciendo cambios importantes a nivel de diseminación de determinantes de resistencia o de clones resistentes. Esta tendencia parece que se mantiene desde principios de 2000 según muestran los resultados de algunos estudios previos realizados en España14.

En nuestro estudio no se observaron aislados panresistentes, mientras que la prevalencia global de aislados MDR (14%) y XDR (7%) fue relativamente baja. Estos porcentajes de resistencia combinada son relativamente parecidos a los descritos en algunos países de centro y sur de Europa, según datos del ECDC de 201726; no obstante estos porcentajes estuvieron muy por debajo de las tasas descritas recientemente en un estudio multicéntrico realizado en España, Grecia e Italia en el que estos porcentajes fueron del 4% para aislados panresistentes, 30% para aislados MDR y 36% para aislados XDR27.

Los aislados obtenidos de muestras respiratorias presentaron mayor resistencia a los antimicrobianos evaluados, particularmente ciprofloxacino y colistina, que los aislados obtenidos de otras muestras, como por ejemplo orina o sangre. Estos resultados son similares a los observados en otros estudios y podrían estar relacionados con un mayor uso de antimicrobianos para el tratamiento de las infecciones respiratorias por P. aeruginosa15.

Este trabajo tiene algunas limitaciones. Los datos de sensibilidad son los comunicados por los centros utilizando diferente metodología, sin que los datos se hayan comprobado en un laboratorio de referencia, pero consideramos que el número de centros participantes y los años y tipo de muestra incluidos nos dan una imagen bastante real de la situación de la sensibilidad a P. aeruginosa en el sur de nuestro país. Mientras no existan bases de datos normalizadas nacionales, este tipo de estudio es necesario para adquirir este tipo de información. Otra limitación que presenta este trabajo es la ausencia de estudios de epidemiología molecular (ej. PFGE, MLST) que podrían ayudar a entender si las prevalencias de las resistencias observadas se pueden ver afectadas (o no) en parte por determinadas situaciones endémicas (ej. clones resistentes o bien de diseminación de determinantes de resistencia horizontales) en alguno(s) de los centros participantes.

En conclusión, la resistencia antimicrobiana en P. aeruginosa en el sur de España no es demasiado elevada en comparación con la descrita en otros estudios14–16,26. Las tasas de resistencia más elevadas se observan con ciprofloxacino, piperacilina/tazobactam y meropenem, siendo los antimicrobianos de mayor actividad colistina, tobramicina y amicacina. Las mayores tasas de resistencia se observan en aislados de muestras respiratorias. En general las tasas de resistencia se mantienen estables durante el periodo de estudio para la mayoría de los antimicrobianos evaluados.

Financiación

Las reuniones del Grupo GRAM fueron parcialmente financiadas por laboratorios MSD.

Conflicto de intereses

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Agradecimientos

Los autores de este trabajo manifiestan su agradecimiento a todos los centros que han participado desinteresadamente en este estudio.

Anexo
Miembros del Grupo GRAM

Eugenio Garduño (H. Infanta Cristina, Badajoz), Purificación Hernández Pérez (H. San Pedro de Alcántara, Cáceres), José Román Muñoz Sanz (H. Virgen del Puerto, Plasencia, Cáceres), Carmen González Velasco (H. General de Mérida, Mérida, Badajoz), Saray Rodríguez (H. Don Benito, Badajoz), José M. Navarro Marí y María Dolores Rojo Martín (H. Virgen de las Nieves, Granada), Marta Álvarez Estévez y Alejandro Peña Monje (H. Universitario San Cecilio, Granada), Waldo Sánchez Yebra (H. Torrecárdenas, Almería), Carolina Roldán Fontana y Lina Martín Hita (Complejo Hospitalario Jaén, Jaén), Encarnación Clavijo Frutos y María Gracia Ortega (H. Virgen de la Victoria, Málaga), Begoña Palop Borrás y Pilar Bermúdez Ruiz (H. Regional de Málaga, Málaga), José Antonio Lepe y Javier Aznar (H. Virgen del Rocío, Sevilla), M. Carmen Domínguez (H. La Merced, Osuna, Sevilla), Irene Gracia Ahufinger y Fernando Rodríguez (H. Reina Sofía, Córdoba), Ana Domínguez Castaño (H. Juan Ramón Jiménez (Huelva), Manuel Rodríguez Iglesias y Fátima Galán Sánchez (H. Puerta del Mar, Cádiz), M. Dolores López Prieto y Juan Manuel Sánchez Calvo (H. de Jerez, Cádiz), José Luis López Barba (H. de Ceuta, Ceuta), Carmen Martínez Rubio (H. Puerto Real, Cádiz)

Bibliografía
[1]
P.M. Olaechea, J. Insausti, A. Blanco, P. Luque.
Epidemiology and impact of nosocomial infections.
Med Intensiva., 34 (2010), pp. 256-267
[2]
Y. Moade, I. Low, S.K. Tambyahb, P.A. Tambyaha.
The socio-economic impact of multidrug-resistant nosocomial infections: a qualitative study.
J Hosp Infect., 18 (2018), pp. 1-7
[3]
R. Zaragoza, P. Ramírez, M.J. López-Pueyo.
Nosocomial infections in intensive care units.
Enferm Infecc Microbiol Clin., 32 (2014), pp. 320-327
[4]
J.T. Thaden, L.P. Park, S.A. Maskarinec, F. Ruffin, V.G. Fowler, D. van Duin.
Results from a 13-year prospective cohort study show increased mortality caused by Pseudomonas aeruginosa compared to other bacteria.
Antimicrob Agents Chemother., 61 (2017), pp. 1-11
[5]
S. Abdellatif, A. Trifi, F. Daly, K. Mahjoub, R. Nasri, S. Ben Lakhal.
Efficacy and toxicity of aerosolised colistin in ventilator-associated pneumonia: a prospective, randomised trial.
Ann Intensive Care., 6 (2016), pp. 26
[6]
A. Potron, L. Poirel, P. Nordmann.
Emerging broad-spectrum resistance in Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii: Mechanisms and epidemiology.
Int J Antimicrob Agents., 45 (2015), pp. 568-585
[7]
C. López-Causapé, G. Cabot, E. Del Barrio-Tofiño, A. Oliver.
The Versatile Mutational Resistome of Pseudomonas aeruginosa.
Front Microbiol., 9 (2018), pp. 685
[8]
E. Riera, G. Cabot, X. Mulet, M. García-Castillo, R. del Campo, C. Juan, et al.
Pseudomonas aeruginosa carbapenem resistance mechanisms in Spain: impact on the activity of imipenem, meropenem and doripenem.
J Antimicrob Chemother., 66 (2011), pp. 2022-2027
[9]
M. Bassetti, A. Vena, A. Russo, A. Croxatto, T. Calandra, B. Guery.
Rational approach in the management of Pseudomonas aeruginosa infections.
Curr Opin Infect Dis., 31 (2018), pp. 578-586
[10]
M. Tato, M. García-Castillo, A.M. Bofarull, R. Cantón, CENIT Study Group.
In vitro activity of ceftolozane/tazobactam against clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa and Enterobacteriaceae recovered in Spanish medical centres: Result of the CENIT study.
Int J Antimicrob Agents., 46 (2015), pp. 502-510
[11]
M.L. Monogue, D.P. Nicolau.
Antibacterial activity of ceftolozane/tazobactam alone and in combination with other antimicrobial agents against MDR Pseudomonas aeruginosa.
J Antimicrob Chemother., 73 (2018), pp. 942-952
[12]
G. Torrens, G. Cabot, A.A. Ocampo-Sosa, M.C. Conejo, L. Zamorano, F. Navarro, et al.
Activity of Ceftazidime-Avibactam against Clinical and Isogenic Laboratory Pseudomonas aeruginosa Isolates Expressing Combinations of Most Relevant β-Lactam Resistance Mechanisms.
Antimicrob Agents Chemother., 60 (2016), pp. 6407-6410
[13]
H. Wright, R.A. Bonomo, D.L. Paterson.
New agents for the treatment of infections with Gram-negative bacteria: restoring the miracle or false dawn?.
Clin Microbiol Infect., 23 (2017), pp. 704-712
[14]
I. Sánchez-Romero, E. Cercenado, O. Cuevas, N. García-Escribano, J. García-Martínez, E. Bouza.
Spanish Group for Study of Pseudomonas aeruginosa Evolution of the antimicrobial resistance of Pseudomonas aeruginosa in Spain: second national study (2003).
Rev Esp Quimioter., 20 (2007), pp. 9-222
[15]
F.J. Pardo Serrano, M.D. Tirado Balague, E.D. García Zúñiga, J. Granados Ortega, A. Campos Aznar, R. Moreno Muñoz.
Pseudomonas aeruginosa: antimicrobial resistance in clinical isolates Castellón 2004-2008.
Rev Esp Quimioter., 23 (2010), pp. 6-20
[16]
M. Del Mar Casal, M. Causse, F. Rodríguez-López, M. Casal.
Antimicrobial resistance in clinical patterns of Pseudomonas aeruginosa.
Rev Esp Quimioter., 25 (2012), pp. 37-41
[17]
M. Díez-Aguilar, M.I. Morosini, A.P. Tedim, I. Rodríguez, Z. Aktaş, R. Cantón.
Antimicrobial activity of fosfomycin-tobramycin combination against Pseudomonas aeruginosa isolates assessed by time-kill assays and mutant prevention concentrations.
Antimicrob Agents Chemother., 59 (2015), pp. 6039-6045
[18]
E. Del Barrio-Tofiño, C. López-Causapé, G. Cabot, A. Rivera, N. Benito, C. Segura, et al.
Genomics and susceptibility profiles of extensively drug-resistant Pseudomonas aeruginosa isolates from Spain.
Antimicrob Agents Chemother., 24 (2017), pp. e01589-e1617
[19]
EUCAST. Clinical Breakpoints and Epidemiological Cut-Off Values. Version 9.0. 2019 [consultado 17 Mar 2019]. Disponible en: http://www.eucast.org/fileadmin/src/media/PDFs/EUCAST_files/Breakpoint_tables/v_9.0_Breakpoint_Tables.pdf.
[20]
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing: twenty-seventh Informational Supplement. Approved standard M100-S29. CLSI, Wayne, PA, USA (2019).
[21]
A.P. Magiorakos, A. Srinivasan, R.B. Carey, Y. Carmeli, M.E. Falagas, C.G. Giske, et al.
Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance.
Clin Microbiol Infect., 18 (2012), pp. 268-281
[22]
EPINE. Estudio de Prevalencia de las Infecciones Nosocomiales en España [consultado 12 Mar 2019]. Disponible en: https://epine.es/docs/public/reports/esp/2017%20EPINE-EPPS%20Informe%20Global%20de%20Espa%C3%B1a%20Resumen.pdf.
[23]
D. Brown, R. Canton, L. Dubreuil, S. Gatermann, C. Giske, A. MacGowan, et al.
Widespread implementation of EUCAST breakpoints for antibacterial susceptibility testing in Europe.
Euro Surveill., 15 (2015), pp. 20
[24]
M.N. Larrosa, N. Benito, R. Cantón, A. Canut, E. Cercenado, F. Fernández-Cuenca, et al.
From CLSI to EUCAST, a necessary step in Spanish laboratories.
Enferm Infecc Microbiol Clin., (2018),
[25]
Kahlmeter G and the EUCAST Steering Committee. Redefining susceptibility testing categories S, I and R., 2019. www.eucast.org.
[26]
ECDC. European Centre for Disease Prevention and Control [consultado 12 Mar 2019]. Disponible en: https://ecdc.europa.eu/sites/portal/files/documents/AMR-surveillance-EARS-Net-2017.pdf
[27]
A. Pérez, E. Gato, J. Pérez-Llarena, F. Fernández-Cuenca, M.J. Gude, M. Oviaño, et al.
High incidence of MDR and XDR Pseudomonas aeruginosa isolates obtained from patients with ventilator-associated pneumonia in Greece Italy and Spain as part of the MagicBullet clinical trial.
J Antimicrob Chemother., (2019),

En el anexo se lista a los miembros del Grupo GRAM.

Copyright © 2019. Elsevier España, S.L.U. and Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Opciones de artículo
Herramientas
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos