Buscar en
Pediatría
Toda la web
Inicio Pediatría Microbiota de la glándula mamaria
Información de la revista
Vol. 48. Núm. 1.
Páginas 1-8 (Enero - Marzo 2015)
Compartir
Compartir
Descargar PDF
Más opciones de artículo
Visitas
45883
Vol. 48. Núm. 1.
Páginas 1-8 (Enero - Marzo 2015)
Original
Open Access
Microbiota de la glándula mamaria
Mammary gland microbiota
Visitas
45883
Lina María Osorioa,
Autor para correspondencia
linamo12@hotmail.com

Autor para correspondencia.
, Ana Solanye Umbarilab
a Médica pediatra, docente, Departamento de Pediatría, Universidad El Bosque, Clínica El Bosque, Bogotá, D.C., Colombia
b Médica general, Departamento de Pediatría, Clínica El Bosque, Bogotá, D.C., Colombia
Este artículo ha recibido

Under a Creative Commons license
Información del artículo
Resumen
Texto completo
Bibliografía
Descargar PDF
Estadísticas
Figuras (2)
Resumen

Revisar y describir aspectos importantes de la literatura científica sobre la microbiota de la glándula mamaria. Se revisaron las bases de datos de revistas científicas.

En sus primeros días de vida, los recién nacidos son rápidamente colonizados por diferentes bacterias, a las que se les atribuye la iniciación de un poderoso sistema de defensa. Se cree que dichas bacterias garantizan un buen desarrollo físico e inmunológico.

La leche materna es uno de los factores que permite la colonización temprana, la cual confiere un sinnúmero de beneficios y tiene un impacto en la salud infantil y en la modulación de determinadas enfermedades a largo plazo.

La forma como las diferentes bacterias colonizan el intestino neonatal formando su propia microbiota, es debatida. Se asume que es multifactorial y que está influenciada por la vía del parto y la lactancia, que determinan una microbiota sana o una alterada de la cual se derivan diferentes enfermedades.

La microbiota de la glándula mamaria es única y son múltiples los factores que convergen para su conformación; con su adecuado establecimiento se generan factores protectores para la vida futura. La administración oral de probióticos derivados de la leche materna, abre la puerta para entender una nueva forma de colonización más eficiente de la microbiota del neonato. Lactobacillus reuteri DSM 17939, Bifidobacterium longum y Lactobacillus fermentum CECT 5716, fueron aislados de la leche materna de mujeres sanas y varios estudios confirman que pueden utilizarse en la nutrición humana.

Palabras clave:
Microbiota
Glándula mamaria
Lactancia materna
Lactobacillus reuteri DSM 17939
Bifidobacterium
longum
Lactobacillus fermentum CECT 5716
Inmunidad
Abstract

To review the literature and to describe the important aspects of mammary gland microbiota using scientific journal databases.Newborns are quickly colonized in their first days of life by different bacteria, which are associated with the beginning of a powerful defense system. It is believed that these bacteria ensure good physical and immunological development.Breast milk is one of the factors that allow early colonization, giving a number of benefits that impact on children's health and the modulation of certain long-term diseases.The way the neonatal intestine colonizes different bacteria and forming its own microbiota is debated. It is assumed to be multifactorial, influenced according to the route of delivery and type of feeding, determining a healthy or altered form where microbiota may modulate different diseases.

The mammary gland microbiota is unique, with multiple factors that lead to its formation.

Its proper establishment will generate protective factors for future life. Oral administration of probiotic milk derivatives open the door to understanding a new way that infant microbiota colonize more efficiently. Lactobacillus reuteri DSM 17939, Bifidobacterium longum and Lactobacillus fermentum CECT 5716 were isolated from the milk of healthy women and several studies confirm that they can be used in human nutrition.

Keywords:
Microbiota
Mammary gland
Breast feeding
Lactobacillus reuteri DSM 17939
Bifidobacterium longum
Lactobacillus fermentum CECT 5716
Immunity
Texto completo
Introducción

Se sabe que las bacterias residentes de forma natural en el ser humano no producen enfermedades, al contrario, contribuyen de manera decisiva al desarrollo y la inmunidad infantiles1; este conocimiento permite entender la importancia del microbioma humano en pediatría2. En el 2007, los National Institutes of Health (NIH) respaldaron el proyecto microbioma humano, creado para aumentar y consolidar el conocimiento sobre su composición, y determinar si, al alterarlo, se afectan la salud y la presentación de determinadas enfermedades3.

La leche materna es el mejor alimento para los recién nacidos y niños lactantes4; tiene una única combinación de nutrientes y componentes bioactivos que aseguran el crecimiento y desarrollo de los infantes5,6. Los lactantes ingieren 800ml de leche al día y una cantidad de 105 a 107 bacterias7. El mayor provecho de la leche humana radica en mantener la salud y la supervivencia del lactante por ser un alimento seguro y rentable8. Tiene beneficios para la vida del niño, como alcanzar un buen crecimiento pondo-estatural y observar mejores resultados en las pruebas de desarrollo intelectual9. Se han encontrado aportes a la salud materna10, ya que el inicio de la lactancia en el posparto inmediato, estimula la producción de oxitocina, hormona encargada de contraer el útero, expulsar la placenta y, así, reducir el sangrado posparto2, además de contribuir a disminuir el riesgo de presentar cáncer de mama y de ovario, a largo plazo11.

La leche materna contiene probióticos, los cuales son “microorganismos vivos”, que confieren beneficios al huésped12, además de prebióticos, que son sustancias no digeribles que estimulan selectivamente el crecimiento favorable de las bacterias probióticas10,13,14; al contener estos compuestos, la leche materna protege contra enfermedades infecciosas1, permite el inicio de la maduración intestinal del niño y confiere efectos inmunomoduladores en su vida futura8, convirtiéndolo en un alimento óptimo para los lactantes15,16.

Una de las recomendaciones de la European Society for Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition (ESPGHAN) y la Organización Mundial de la Salud (OMS) con respecto a la alimentación de los infantes, es conseguir una lactancia materna exclusiva durante los primeros seis meses de edad, considerándola como una meta deseable17. De los seis meses hasta los dos años de edad, la OMS recomienda continuar la lactancia materna con refuerzo de alimentos complementarios; esta entidad afirma que la lactancia materna reduce la mortalidad infantil. Las tasas de diarrea y de las infecciones de vías respiratorias y otitis media, son más bajas en los niños alimentados con leche materna en comparación con los demás1,16. Los intereses mundiales están dirigidos a los primeros mil días de vida18, desde la concepción hasta los dos años de edad3,19. Este periodo se conoce como la ventana de la oportunidad, ya que es crucial para garantizar un óptimo desarrollo físico e intelectual, por medio de una nutrición adecuada; a este respecto, a la microbiota de la leche materna humana se le atribuye un papel importante20.

Se ha encontrado que la lactancia materna protege contra algunas enfermedades infecciosas, lo cual se atribuye a sus múltiples componentes, de los cuales diferentes artículos destacan: inmunoglobulinas, células inmunitarias11, probióticos, carbohidratos, ácidos grasos2, minerales, vitaminas16,21 y prebióticos como los galacto-oligosacáridos1, que inducen el desarrollo y la actividad metabólica de las bacterias benéficas en la flora intestinal del infante, favoreciendo efectos inmunológicos directos10. Estos oligosacáridos actúan en el sistema del tejido linfoide asociado a las mucosas, parecen influir en la maduración de linfocitos y, además, confieren un efecto protector frente a la enterocolitis necrosante en neonatos nacidos prematuros1. La lactancia también sobresale por sus aportes a las madres que lactan por un periodo mínimo de seis meses, al producir un efecto protector para la madre contra la obesidad16, la osteoporosis, el cáncer de seno y la diabetes mellitus, entre otros1,2.

Composición del microbioma humano

El término ‘microbioma’ se refiere al “número total de microorganismos y su material genético”, y ‘microbiota’ es la “población microbiana presente en los diferentes ecosistemas en el cuerpo”22.

En el ser humano, se han identificado microbiotas en varios sitios del cuerpo que están colonizados por diferentes grupos de bacterias23. Se clasifican en filos, donde se destacan diferentes especies y géneros, con predominio de Firmicutes, Actinobacteria, Proteobacteria y Bacteriodetes3. A este grupo de bacterias se les atribuye un papel determinante en el desarrollo de la inmunidad y la capacidad para responder frente a diferentes microorganismos; se considera la primera línea de defensa contra agentes patógenos24.

En el tubo digestivo de los neonatos predominan Firmicutes, Bacteriodetes y Proteobacterias, aunque hay gran variabilidad individual según el tiempo en que se adquiere esta microbiota. El intestino del recién nacido es colonizado en los primeros días por Escherichia coli, Enterococcus spp., Streptococcus a-hemolítico y Staphylococcus spp.3,12. Existen diferencias en la composición del microbioma del recién nacido según la vía del parto, la hospitalización y la dieta; por ejemplo, los nacidos por vía vaginal adquieren la microbiota materna vaginal e intestinal, mientras que en los nacidos por cesárea predomina la microbiota de la piel materna y del ambiente hospitalario. Morelli postuló que los niños nacidos por cesárea parecen tener un menor número de bacterias, en comparación con los nacidos por vía natural25, ya que cuentan con niveles más bajos de bifidobacterias, y niveles superiores de Clostridium difficile; los bebes prematuros tienen una microbiota intestinal diferente a la de los nacidos a término26. Factores como su estancia prolongada en unidades neonatales y el uso de antibióticos, retrasan la adquisición de la microbiota intestinal, que facilita la presentación de enfermedades por microorganismos patógenos12.

Composición de la leche materna

Hace algunos años se creía que la leche materna era un fluido estéril3,7,27–29 y se excluía de los análisis microbiológicos. Sin embargo, desde 2003 empezaron a verse estudios sobre una posible microbiota en la leche materna de mujeres sanas2; esto despertó interés para investigar la diversidad bacteriana en la leche materna. Así, se han identificado en diferentes géneros, como Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Lactococcus spp., Leuconostoc spp., Weisella spp., Enterococcus spp., Propionibacterium spp., Lactobacillus spp. y Bifidobacterium spp.3,21 que, por medio de la lactancia, colonizan el intestino neonatal.

Los factores que influyen en la colonización de la microbiota de la leche materna, pueden ser extrínsecos, como área geográfica materna, ambiente bacteriano circundante, tipo de parto, medidas de higiene, hábitos alimentarios y tratamientos con medicamentos30; los factores intrínsecos incluyen genética neonatal, receptores de mucosa bacteriana, pH intestinal y respuesta inmunitaria3,31.

La leche materna tiene una microbiota característica. Se discute el origen de estas bacterias benéficas. En varios estudios se han encontrado dos teorías para justificar la presencia de bacterias en la leche materna. La primera, tradicionalmente aceptada, exponía que la microbiota encontrada en la leche materna era debida a contaminación7,32, con la piel alrededor de la glándula mamaria, con la cavidad oral del neonato asumiendo un paso de bacterias desde la boca del niño a la glándula mamaria y a la leche materna, favorecido por un flujo retrógrado entre los conductos mamarios, obtenidas desde el intestino materno, además de inoculación durante el paso por el canal del parto, este último conocido como “trasplante natural de bacterias”2 (fig. 1).

Figura 1.

Teoría de la contaminación. Modificado de Jeurink et al.2

(0,12MB).

Se encuentran argumentos en contra de esta teoría, entre las que se destaca el hecho de que las bifidobacterias son anaerobios estrictos; las bacterias pueden aislarse del calostro antes de que el niño nazca, y bacterias vivas administradas oralmente a la madre lactante, son encontradas en la leche materna2; además, Jeurink et al. sugieren que, aunque algunos lactobacilos vaginales se transfieren al niño cuando nace, no colonizan con éxito el intestino neonatal2. La secuencia de lactobacilos aislados de las heces de los niños, es similar a la encontrada en la leche materna de su respectiva madre. Los lactobacilos de leche materna no son iguales a los lactobacilos vaginales2.

La segunda teoría, conocida como ‘migración activa’2, postula una ruta entero-mamaria endógena7,21. Se considera que, de alguna forma, las bacterias del intestino materno colonizan la glándula mamaria y, finalmente, pasarían por medio de la lactancia al neonato, confiriendo múltiples beneficios, previniendo enfermedades infecciosas y contribuyendo a la maduración del sistema inmunológico. Aún no se ha establecido claramente el proceso por el cual las bacterias eluden el escudo protector del huésped sano, evitando ser fagocitadas33.

Se postula que las bacterias propias de la microbiota intestinal se unen a las células dendríticas o macrófagos en el intestino materno34, acceden al epitelio intestinal sin cambiar la estructura de la barrera epitelial, transportando estos microorganismos desde las placas de Peyer35 a los ganglios linfáticos mesentéricos29; de allí, acceden a otros tejidos del sistema linfoide asociado a mucosas, entre las que sobresalen, la respiratoria y la genitourinaria, y las glándulas salivales y lacrimales, incluyendo la misma glándula mamaria (fig. 2).

Figura 2.

Teoría de migración activa. Modificado de Martín et al., 200411.

(0,48MB).

Uno de los mecanismos mencionados por Jeurink et al. es la propiedad que se le ha conferido a los exopolisacáridos de las bacterias de la microbiota intestinal por su habilidad de permanecer inmunológicamente silenciosos, para evadir la respuesta inmunitaria del huésped2, lo cual favorece su migración activa a la glándula mamaria. También, se cree que el influjo hormonal durante la gestación y la lactancia contribuye a este proceso, recordando que durante el embarazo hay un aumento de la linfa y de la circulación hacia la glándula mamaria, lo que ayuda a la dilatación de los conductos mamarios.

Por otra parte, se acepta que la progesterona evita la fagocitosis por las células inmunitarias, interrumpiendo la acción de los receptores toll34, los cuales inician la señalización inmunitaria, garantizando así la inactividad de citocinas proinflamatorias, como el TNFa y la interleucina (IL) 1B, sin afectar la acción de otras citocinas antiinflamatorias como la IL 10. La prolactina se ha encontrado como una posible colaboradora en este proceso; sin embargo, hay un amplio campo por investigar frente a las acciones de las hormonas durante la gestación.

La microbiota de la glándula mamaria está formada por bacterias benéficas que acceden a la glándula a través de una ruta interna. Una vez iniciada la lactancia, son transferidas al intestino de los niños que son amamantados. Un mecanismo que lleva a la conformación de la microbiota intestinal neonatal, es la modulación neuroendocrina; se postula una comunicación bidireccional entre el sistema nervioso entérico y el sistema nervioso central, conocido como eje microbiota-intestino-cerebro36. Se considera que el cerebro influye en la microbiota intestinal, liberando neuropéptidos y hormonas; asimismo, la microbiota intestinal influye en la función cerebral, el comportamiento y el desarrollo. Se ha encontrado que los lactobacilos de la leche materna son indispensables para una función adecuada de este eje; se podrían utilizar en intervenciones nutricionales para promover una microbiota más eficiente37.

Probióticos derivados de la leche materna utilizados en pediatría

En la medicina pediátrica, se encuentran tres probióticos utilizados para mejorar la microbiota intestinal de los niños.

Lactobacillus reuteri DSM 17939

Este lactobacilo resulta de la manipulación genética del Lactobacillus reuteri ATCC55730 pues este trasmitía resistencia para las tetraciclinas y las lincosamidas, por lo que se retira este plásmido y se obtiene el Lactobacillus reuteri DSM 17939, que es el que se encuentra comercialmente disponible38.

Los estudios con este probiótico están orientados, entre otras cosas, para el tratamiento del cólico del lactante39. En el estudio doble ciego de asignación aleatoria de Savino, et al., se incluyeron 105 niños, 51 en el grupo experimental, a quienes se les administró L. reuteri DSM 17939 (108 UFC) más vitamina D3, y 54 niños en el grupo control, a quienes se les administró vitamina D3; se halló disminución del cólico y reducción de las consultas al pediatra, en el grupo tratado40.

En el estudio de Szajewska et al., se estudiaron 80 niños menores de cinco meses con cólico del lactante, quienes eran alimentados exclusivamente o parcialmente (50%) con leche materna; se incluyeron 40 infantes en el grupo experimental, quienes recibieron L. reuteri (108 UFC) una vez al día durante 21 días, y 40, en el grupo con placebo; Se observó una mayor respuesta terapéutica en el grupo tratado con este probiótico41.

En el estudio de Sung et al., se incluyeron 167 niños menores de tres meses, alimentados con leche materna o con leche de fórmula; 85 recibieron el probiótico L. reuteri DSM 17939 y, 82, el placebo; se concluyó que el uso de L. reuteri no beneficiaba a la población estudiada42.

Bifidobacterium longum

Las bifidobacterias forman parte de la microbiota de los lactantes43 y es uno de los microorganismos dominantes en el intestino desde la primera semana de vida hasta el destete; se asocia con la protección de la mucosa intestinal contra las bacterias patógenas y con el desarrollo de la barrera de defensa de la mucosa del infante44.

En el estudio de Makino et al., se demostró que B. longum se transmite del intestino de la madre a su hijo inmediatamente después de nacer y que estas cepas posteriormente colonizan el intestino del bebé; cada cepa se identifica solo en un par madre-hijo en particular y pertenece a su propia agrupación44.

En otro estudio, de Hascoët et al., se observó el efecto bifidogénico de una “fórmula estudio” que incluía proteínas de suero de leche, fórmula baja en fosfato y proteínas, con B. longum y sin ella, lo que permite una composición cercana a la de la leche humana; se comparó con otra “fórmula control” con B. longum y con un tercer “grupo de referencia” de bebés alimentados con leche materna. Se demostró que la “fórmula estudio” conduce a un perfil de la microbiota intestinal más cercana a la de los bebés alimentados con leche materna45.

Simakachorn et al., en un estudio en dos unidades de cuidados intensivos en un hospital de Tailandia, evaluaron la tolerancia y la seguridad de una fórmula entérica que contenía una mezcla simbiótica (compuesta por dos cepas probióticas [Lactobacillus paracasei NCC 2461 y B. longum NCC 3001], fructo-oligosacáridos, inulina y goma arábiga), que se administró a niños gravemente enfermos; esta fórmula fue tan bien tolerada como la fórmula utilizada en la actualidad y se demostró que era seguro su uso en relación con la fórmula de control46.

Lactobacillus fermentum CECT 5716

Lactobacillus fermentum CECT 5716 fue aislado de la leche materna de mujeres sanas; se encontró en la cavidad oral, en el intestino y en la materia fecal de los niños47. Lactobacillus es capaz de colonizar la glándula mamaria cuando se suministra oralmente a mujeres lactantes48; tiene una supervivencia del 70% en el tubo digestivo32. Esto demuestra que posee una adecuada función en el lugar de acción; produce glutatión, un antioxidante natural, ácido láctico y ácido acético; posee capacidad de adhesión a los enterocitos, evitando que se unan bacterias patógenas a ellos32,49. Se encuentra incluido en la lista de las bacterias QPS (con presunción de inocuidad reconocida) de la European Food Safety Authority (EFSA), lo cual permite que se utilice en la nutrición humana, y no trasmite información de resistencia antibiótica a otras bacterias49,50.

Lactobacillus fermentum CECT 5716ha sido estudiado in vitro y en animales; en el estudio de Peran et al. se indujo colitis en 20 ratones. Al grupo experimental (n = 10) se le administró oralmente L. fermentum durante tres semanas, comenzando dos semanas antes de la intervención (colitis), y se encontró mejoría de la reacción inflamatoria, evidenciada histológicamente y por una reducción de la mieloperoxidasa (p < 0,05). El probiótico contrarrestó la disminución de glutatión, mostró cantidades menores de FNTa (p < 0,01) y sintetasa inducible de óxido nítrico (iNOS)51.

En el estudio de Olivares et al., se encontró inhibición del crecimiento de Salmonella spp. in vitro e in vivo (ratones) y aumento de 60% de la supervivencia de los ratones infectados con Salmonella spp. (p < 0,05) que habían recibido L. fermentum24. Se consideró que el lactobacilo es inmunomodulador, mejora la respuesta TH1 y aumenta la producción de IgA en ratones52.

Lactobacillus fermentum se ha estudiado en humanos. El primer estudio fue hecho por Maldonado et al. Se incluyeron 215 niños saludables, inicialmente con edad de seis meses, los cuales habían sido alimentados exclusivamente con leche de fórmula, sin prebióticos o probióticos. El objetivo principal fue evaluar el índice de infecciones gastrointestinales y respiratorias, y el secundario fue evaluar los parámetros de crecimiento (peso, talla, perímetro cefálico), según las tablas de la OMS. Fue un estudio doble ciego controlado y con asignación aleatoria. De los 215 niños incluidos, se excluyeron 27 y quedaron 188, los cuales recibieron leche de fórmula, 91 en el grupo control y 97 en el grupo con probiótico durante seis meses. La incidencia de infección fue de 1,46 episodios por niño con probiótico frente a 2,08 episodios por niño en el grupo control. La reducción del riesgo general de infección fue de 30% (proporción de incidencia: 0,70; IC95%: 0,57-0,88; p = 0,002) y la fórmula probiótica mostró un efecto benéfico en la prevención de infecciones respiratorias y gastrointestinales. Se encontraron 33 episodios gastrointestinales en el grupo control y, en el grupo con probiótico, 19 episodios, lo que corresponde a una reducción de 46% (IC95%: 0,31-0,95; p = 0,032); hubo 134 episodios de infecciones respiratorias en el grupo control y, en el grupo con probiótico, 106 episodios, con una reducción de 26% en los episodios (IC95%: 0,58-0,96; p = 0,022)53.

En otro estudio, de Gil-Campos et al., con niños de uno a seis meses de edad, se incluyeron 137 niños alimentados exclusivamente con leche de fórmula sin probióticos, 71 alimentados con fórmula sin probióticos en el grupo control y 66 en el grupo con probiótico; fue un estudio controlado doble ciego y de asignación aleatoria. El objetivo principal era evaluar la ganancia de peso en los niños estudiados y, el secundario, evaluar la talla, el perímetro cefálico, la incidencia de infecciones gastrointestinales, el consumo de la fórmula y la tolerancia. Ambas fórmulas fueron administradas durante cinco meses, desde el mes hasta los seis meses de edad. Los niños estudiados tuvieron una ganancia de peso en concordancia con los estándares de la OMS, sin diferencia significativa (p = 0,061). No se encontraron diferencias significativas entre los grupos54. Se encontró una reducción de 71% de infecciones gastrointestinales, por una reducción en la tasa de incidencia (IRR = 0,289; IC95%: 0,085-0,831; p = 0,018). La posibilidad de presentar infección gastrointestinal en el grupo con probiótico fue tres veces menor que en el grupo control. Se detectó L. fermentum vivo en 53% en las heces del grupo con probiótico. No se encontraron diferencias en la incidencia de enfermedades respiratorias entre ambos grupos, aunque fue más bajo en el grupo probiótico.

Conclusión

El estudio del microbioma humano ha abierto las puertas para el entendimiento de la microbiota en diferentes órganos, incluida la glándula mamaria. La conformación de esta microbiota tiene procesos específicos que le confieren características únicas, lo que lleva a entender que la administración de probióticos al recién nacido debería provenir de la glándula mamaria, para lograr una adecuada colonización intestinal y tener una adecuada función del eje cerebro-intestino-microbiota. L. reuteri, B. longum y L. fermentum CECT 5716 se aislaron de la leche materna de mujeres sanas y varios estudios confirman que pueden utilizarse en la nutrición de los lactantes.

Conflicto de intereses

La Dra. Lina María Osorio trabaja como asesora científica de Lactalis – Parmalat.

Bibliografía
[1]
J.T. Smilowitz, C.B. Lebrilla, D.A. Mills, J.B. German, S.L. Freeman.
Breast milk oligosaccharides: structure-function relationships in the neonate.
Annu Rev Nutr, 34 (2014), pp. 143-169
[2]
P.V. Jeurink, J. van Bergenhenegouwen, E. Jiménez, L.M. Knippels, L. Fernández, J. Garssen, et al.
Human milk: a source of more life than we imagine.
Benef Microbes, 4 (2013), pp. 17-30
[3]
C.L. Johnson, J. Versalovic.
The human microbiome and its potential importance to pediatrics.
Pediatrics, 129 (2012), pp. 950-960
[4]
R. Cabrera-Rubio, M.C. Collado, K. Laitinen, S. Salminen, E. Isolauri, A. Mira.
The human milk microbiome changes over lactation and is shaped by maternal weight and mode of delivery.
Am J Clin Nutr, 96 (2012), pp. 544-551
[5]
E. Jiménez, S. Langa, V. Martín, R. Arroyo, R. Martín, L. Fernández, et al.
Complete genome sequence of Lactobacillus fermentum CECT 5716, a probiotic strain isolated from human milk.
J Bacteriol, 192 (2010), pp. 4800
[6]
A. Marcobal, J.L. Sonnenburg.
Human milk oligosaccharide consumption by intestinal microbiota.
Clin Microbiol Infect, 18 (2012), pp. 12-15
[7]
J.M. Rodriguez, E. Jimenez, V. Merino, A. Maldonado, M.L. Marin, L. Fernandez, et al.
Microbiota de la leche humana en condiciones fisiológicas.
Acta Pediatr Esp, 66 (2008), pp. 77-82
[8]
D.S. Newburg, Innate Immunity, Milk. Human.
American Society for Nutritional Sciences.
Symposium by the American Society for Nutritional Sciences, (2005), pp. 1-5
[9]
N. León-Cava, C. Lutter, J. Ross, L. Martin.
Quantifying the benefits of breastfeeding: a summary of the evidence Washington (DC): PAHO;, (2002),
[10]
K. Kukkonen, E. Savilahti, T. Haahtela, K. Juntunen-Backman, R. Korpela, T. Poussa, et al.
Long-term safety and impact on infection rates of postnatal probiotic and prebiotic (synbiotic) treatment: randomized, double-blind, placebo-controlled trial.
Pediatrics, 122 (2008), pp. 8-12
[11]
R. Martín, S. Langa, C. Reviriego, E. Jimenez, M. Marin, M. Olivares, et al.
The commensal microflora of human milk: new perspectives for food bacteriotherapy and probiotics.
Trends Food Sci Technol, 15 (2004), pp. 121-127
[12]
T.M. Marques, R. Wall, R.P. Ross, G.F. Fitzgerald, C.A. Ryan, C. Stanton.
Programming infant gut microbiota: influence of dietary and environmental factors.
Curr Opin Biotechnol, 21 (2010), pp. 149-156
[13]
L. Bode.
Human milk oligosaccharides: every baby needs a sugar mama.
Glycobiology, 22 (2012), pp. 1147-1162
[14]
D.W. Thomas, F.R. Greer.
American Academy of Pediatrics Committee on Nutrition; American Academy of Pediatrics Section on Gastroenterology.
Hepatology, and Nutrition Probiotics and prebiotics in pediatrics Pediatrics, 126 (2010), pp. 1217-1231
[15]
P.S. Gavilanes, H.A. Manjarrez, A. Cravioto.
Inmunoproteccion por leche humana.
Rev Mex Pediatr, 69 (2002), pp. 111-119
[16]
K.M. Hunt, J.A. Foster, L.J. Forney, U.M. Schütte, D.L. Beck, Z. Abdo, et al.
Characterization of the diversity and temporal stability of bacterial communities in human milk.
[17]
C.W. Binns, M.K. Lee.
Exclusive breastfeeding for six months: the WHO six months recommendation in the Asia Pacific Region.
Asia Pac J Clin Nutr, 23 (2014), pp. 344-350
[18]
Lodesani G. Programa Mundial de Alimentos. Luchando contra el hambre en el mundo. Los primeros mil dias [en línea]. 2012 04 Oct [consultado 27 Dic 2014]. Disponible en: http://es.wfp.org/noticias/comunicado/los-primeros-mil-di.
[19]
E.L. Prado, K.G. Dewey.
Nutrition and brain development in early life.
Nutr Rev, 72 (2014), pp. 267-284
[20]
C. Victora.
[The thousand days opportunity for nutritional interventions: from conception to two years of life].
Arch Argent Pediatr, 110 (2012), pp. 311-317
[21]
H. Bergmann, J.M. Rodríguez, S. Salminen, H. Szajewska.
Probiotics in human milk and probiotic supplementation in infant nutrition: a workshop report.
Br J Nutr, 112 (2014), pp. 1119-1128
[22]
S. Khanna, P.K. Tosh.
A clinician's primer on the role of the microbiome in human health and disease.
Mayo Clin Proc, 89 (2014), pp. 107-114
[23]
C. Urbaniak, J. Cummins, M. Brackstone, J.M. Macklaim, G.B. Gloor, C.K. Baban, et al.
Microbiota of human breast tissue.
Appl Environ Microbiol, 80 (2014;), pp. 3007-3014
[24]
M. Olivares, M.P. Díaz-Ropero, R. Martín, J.M. Rodríguez, J. Xaus.
Antimicrobial potential of four Lactobacillus strains isolated from breast milk.
J Appl Microbiol, 101 (2006), pp. 72-79
[25]
L. Morelli.
Postnatal development of intestinal microflora as influenced by infant nutrition.
J Nut, 138 (2008;), pp. 5S-1791S
[26]
M.W. Groer, A.A. Luciano, L.J. Dishaw, T.L. Ashmeade, E. Miller, J.A. Gilbert.
Development of the preterm infant gut microbiome: a research priority.
Microbiome, 2 (2014), pp. 38
[27]
L. Fernández, S. Langa, V. Martín, A. Maldonado, E. Jiménez, R. Martín, et al.
The human milk microbiota: origin and potential roles in health and disease.
Pharmacol Res, 69 (2013), pp. 1-10
[28]
F. Lara-Villoslada, M. Olivares, S. Sierra, J.M. Rodríguez, J. Boza, J. Xaus.
Beneficial effects of probiotic bacteria isolated from breast milk.
Br J Nutr, 98 (2007), pp. S96-S100
[29]
A. Donnet-Hughes, P.F. Perez, J. Doré, M. Leclerc, F. Levenez, J. Benyacoub, et al.
Potential role of the intestinal microbiota of the mother in neonatal immune education.
Proc Nutr Soc, 69 (2010), pp. 407-415
[30]
E.W. Rogier, A.L. Frantz, M.E. Bruno, L. Wedlund, D.A. Cohen, A.J. Stromberg, et al.
Lessons from mother: long-term impact of antibodies in breast milk on the gut microbiota and intestinal immune system of breastfed offspring.
Gut Microbes, 5 (2014), pp. 663-668
[31]
M.K. McGuire, M.A. McGuire.
Human milk: mother nature's prototypical probiotic food?.
Adv Nutr, 6 (2015), pp. 112-123
[32]
R. Martín, M. Olivares, M.L. Marín, L. Fernández, J. Xaus, J.M. Rodríguez.
Probiotic potential of 3 Lactobacilli strains isolated from breast milk.
J Hum Lact, 21 (2005), pp. 8-17
[33]
M.P. Díaz-Ropero, R. Martín, S. Sierra, F. Lara-Villoslada, J.M. Rodríguez, J. Xaus, et al.
Two Lactobacillus strains, isolated from breast milk, differently modulate the immune response.
J Appl Microbiol, 102 (2007), pp. 337-343
[34]
D.S. Newburg, W.A. Walker.
Protection of the neonate by the innate immune system of developing gut and of human milk.
[35]
T.O. Brunser, El desarrollo de la microbiota intestinal humana.
el concepto de probiótico y su relación con la salud humana.
Rev Chil Nutr, 40 (2013), pp. 283-289
[36]
S.M. Collins, P. Bercik.
The relationship between intestinal microbiota and the central nervous system in normal gastrointestinal function and disease.
Gastroenterology, 136 (2009), pp. 2003-2014
[37]
F. Indrio, G. Riezzo, F. Raimondi, A. Di Mauro, R. Francavilla.
Microbiota involvement in the gut-brain axis JPGN, 57 (2013), pp. 11-14
[38]
A. Rosander, E. Connolly, S. Roos.
Removal of antibiotic resistance gene-carrying plasmids from Lactobacillus reuteri ATCC 55730 and characterization of the resulting daughter strain.
L reuteri DSM 17938 Appl Environ Microbiol, 74 (2008), pp. 6032-6040
[39]
F. Savino, S. Ceratto, A. De Marco, L. Cordero di Montezemolo.
Looking for new treatments of Infantile Colic.
Ital J Pediatr, 40 (2014), pp. 53
[40]
F. Savino, S. Ceratto, E. Poggi, M.E. Cartosio, M.L. Cordero, A. Giannattasio.
Preventive effects of oral probiotic on infantile colic: a prospective, randomised, blinded, controlled trial using Lactabacillus reuteri DSM 17938.
Benef Microbes, 6 (2015), pp. 245-251
[41]
H. Szajewska, E. Gyrczuk, A. Horvath.
Lactobacillus reuteri DSM 17938 for the management of infantile colic in breastfed infants: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial.
J Pediatr, 162 (2013), pp. 257-262
[42]
V. Sung, H. Hiscock, M.L. Tang, F.K. Mensah, M.L. Nation, C. Satzke, et al.
Treating infant colic with the probiotic Lactobacillus reuteri: double blind, placebo controlled randomised trial.
BMJ, 348 (2014;),
[43]
M.M. Grönlund, M. Gueimonde, K. Laitinen, G. Kociubinski, T. Grönroos, S. Salminen, et al.
Maternal breast-milk and intestinal bifidobacteria guide the compositional development of the Bifidobacterium microbiota in infants at risk of allergic disease.
Clin Exp Allergy, 37 (2007), pp. 1764-1772
[44]
H. Makino, A. Kushiro, E. Ishikawa, D. Muylaert, H. Kubota, T. Sakai, et al.
Transmission of intestinal Bifidobacterium longum subsp. longum strains from mother to infant, determined by multilocus sequencing typing and amplified fragment length polymorphism.
Appl Environ Microbiol, 77 (2011;), pp. 6788-6793
[45]
J.M. Hascoët, C. Hubert, F. Rochat, H. Legagneur, S. Gaga, S. Emady-Azar, et al.
Effect of formula composition on the development of infant gut microbiota.
J Pediatr Gastroenterol Nutr, 52 (2011), pp. 756-762
[46]
N. Simakachorn, R. Bibiloni, P. Yimyaem, Y. Tongpenyai, W. Varavithaya, D. Grathwohl, et al.
Tolerance, safety, and effect on the faecal microbiota of an enteral formula supplemented with pre- and probiotics in critically ill children.
J Pediatr Gastroenterol Nutr, 53 (2011), pp. 174-181
[47]
R. Martín, S. Langa, C. Reviriego, E. Jimínez, M.L. Marín, J. Xaus, et al.
Human milk is a source of lactic acid bacteria for the infant gut.
J Pediatr, 143 (2003), pp. 754-758
[48]
H.E. Lopez.
Safety and efficacy of human breast milk Lactobacillus fermentum CECT 5716. A mini-review of studies with infant formulae.
Benef Microbes, 17 (2014), pp. 1-6
[49]
Cárdenas N, Laiño JE, Delgado S, Jiménez E, Juárez Del Valle M, Savoy de Giori G, et al. Relationships between the genome and some phenotypical properties of Lactobacillus fermentum CECT 5716, a probiotic strain isolated from human milk. Appl Microbiol Biotechnol. 2015 Feb. http://dx.doi.org/10.1007/s00253-015-6429-0 PMID: 25661998.
[50]
F. Lara-Villoslada, S. Sierra, M.P. Díaz-Ropero, J.M. Rodríguez, J. Xaus, M. Olivares.
Safety assessment of Lactobacillus fermentum CECT5716, a probiotic strain isolated from human milk.
J Dairy Res, 76 (2009), pp. 216-221
[51]
L. Peran, D. Camuesco, M. Comalada, A. Nieto, A. Concha, J.L. Adrio, et al.
Lactobacillus fermentum, a probiotic capable to release glutathione, prevents colonic inflammation in the TNBS model of rat colitis.
Int J Colorectal Dis, (2006;), pp. 21737-21746
[52]
B. Arribas, M.E. Rodríguez-Cabezas, M. Comalada, E. Bailón, D. Camuesco, M. Olivares, et al.
Evaluation of the preventative effects exerted by Lactobacillus fermentum in an experimental model of septic shock induced in mice.
Br J Nutr, 101 (2009), pp. 51-58
[53]
J. Maldonado, F. Cañabate, L. Sempere, F. Vela, A.R. Sánchez, E. Narbona, et al.
Human milk probiotic Lactobacillus fermentum CECT5716 reduces the incidence of gastrointestinal and upper respiratory tract infections in infants.
J Pediatr Gastroenterol Nutr, 54 (2012), pp. 55-61
[54]
M. Gil-Campos, M.A. López, M.V. Rodriguez-Benítez, J. Romero, I. Roncero, M.D. Linares, et al.
Lactobacillus fermentum CECT 5716 is safe and well tolerated in infants of 1-6 months of age: a randomized controlled trial.
Pharmacol Res, 65 (2012), pp. 231-238
Opciones de artículo
Herramientas