Buscar en
Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Toda la web
Inicio Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica Baja prevalencia de aislados mcr-1 positivos en enterobacterias en nuestra área
Información de la revista
Vol. 35. Núm. 7.
Páginas 467-468 (Agosto - Septiembre 2017)
Vol. 35. Núm. 7.
Páginas 467-468 (Agosto - Septiembre 2017)
Carta científica
Acceso a texto completo
Baja prevalencia de aislados mcr-1 positivos en enterobacterias en nuestra área
Low prevalence of mcr-1 positive Enterobacteriaceae isolates in a health area
Visitas
4276
Víctor José Heras-Cañasa,
Autor para correspondencia
victor.jhc88@gmail.com

Autor para correspondencia.
, Lorena López-Cererob, Paula Díaz de-Albac, Álvaro Pascualb,c
a Unidad de Gestión Clínica de Microbiología, Hospital Universitario Virgen de las Nieves, Complejo Hospitalario Universitario de Granada, Granada, España
b Unidad Intercentros de Enfermedades Infecciosas, Microbiología y Medicina Preventiva, Hospital Universitario Virgen Macarena, Sevilla, España
c Departamento de Microbiología, Universidad de Sevilla, Sevilla, España
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Texto completo
Bibliografía
Descargar PDF
Estadísticas
Texto completo
Sr. Editor:

Recientemente se ha descrito un nuevo determinante de resistencia a colistina de codificación plasmídica (mcr-1) en enterobacterias en China1. El gen mcr-1 fue detectado en aislados de Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae procedentes de muestras de ganado porcino, carnes de pollo y cerdo, e incluso en aislados clínicos1. Posteriormente, este gen ha sido detectado en Europa, África y América del Sur2–4, incluyendo también aislados de Salmonella enterica ser. Typhimurium2. La presencia de un determinante de resistencia a colistina de diseminación horizontal, en un contexto epidemiológico en el que se está produciendo una emergencia de infecciones por enterobacterias productoras de carbapenemasas y bacilos gramnegativos multirresistentes, supone una amenaza sanitaria, ya que este antibiótico es una de las escasas opciones terapéuticas disponibles. El objetivo de este estudio fue conocer la prevalencia de este nuevo determinante en nuestra área sanitaria.

Entre abril y mayo de 2016, en el Servicio de Microbiología del Hospital Virgen Macarena (área sanitaria de 481.263 habitantes) se estudiaron un total de 1260 aislados de enterobacterias. El estudio de sensibilidad se realizó por microdilución en caldo utilizando paneles comerciales MicroScan® (Beckman Coulter, EE.UU.) empleándose los criterios de EUCAST 2016 para la interpretación de las CMI de colistina (resistencia >2μg/ml) (The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 6.0, 2016. http://www.eucast.org). Aquellos aislados que presentaron una CMI para colistina >2mg/l, descartando los aislados pertenecientes a los géneros Proteus, Morganella y Providencia (n=19) (no hubo ningún aislado de Serratia marcescens en este periodo), se estudiaron mediante E-Test® (BioMérieux).

En 24 aislados (1,9%) se observó un valor de CMI a colistina por MicroScan®>2mg/l e incluían 18 aislados de E. coli (2%), 3 de K. pneumoniae (1,6%), 3 de S. enterica (9%) y uno de Enterobacter aerogenes (4%). El valor de CMI a colistina mediante E-test® fue inferior a 0,5mg/l en 22 (92%) aislados, y 2 aislados de E. coli (0,2% respecto al total de E. coli estudiados) mostraron valores de 4mg/l. La detección de mcr-1 fue positiva en uno de los 2 aislados mediante PCR utilizando cebadores previamente descritos1, y posterior secuenciación. El aislado procedía de una muestra de orina de atención primaria de una mujer de 56 años sin enfermedad urinaria previa y sin tratamiento previo con colistina. Este aislado correspondía a una cepa de E. coli ST58 mediante MLST (http://mlst.warwick.ac.uk/mlst/dbs/Ecoli/) del filogrupo B1, que era también resistente a ampicilina, piperacilina, tetraciclina, ácido nalidíxico y cotrimoxazol. Se llevó a cabo la extracción de plásmidos mediante el método de Kieser y posterior electroporación en E. coli DH10 seleccionado con agar Mueller-Hinton, suplementado con 2mg/l de colistina. El plásmido se caracterizó como IncX4 mediante el subtipado del replicón IncX5. Cabe destacar la discrepancia observada entre los resultados obtenidos con los paneles MicroScan® y el método E-testv (22 aislados), lo cual ha sido ya comentado recientemente en varios estudios en los que la correlación entre el sistema automatizado MicroScan® y el método de referencia (microdilución en caldo) fue inferior que la del E-test®6,7. En función de esto, en los casos de discrepancias, tomamos los valores del E-test® como referencia.

La prevalencia de este determinante en aislados clínicos durante el periodo de estudio en nuestra área es muy baja (0,2% del total de aislados de E. coli y 0,08% del total de enterobacterias excluyendo las naturalmente resistentes a colistina), similar a lo observado en el Reino Unido (0,05%)2, e inferior a lo descrito en China (1,1%)1. Asimismo, la prevalencia en aislados de origen animal en Europa es baja (1,2% en España8, 1,5% en Holanda9), en comparación con China (20,6%)1. Se ha descrito también la presencia del gen mcr-1 en enterobacterias productoras de betalactamasas de espectro extendido y enterobacterias productoras de carbapenemasas10, sin embargo, no existen datos sobre su prevalencia. La presencia de este determinante de resistencia ha sido detectado previamente en plásmidos de diferentes grupos de incompatibilidad (IncI2, X4, H12 y P)11, que no codificaron mecanismos de resistencia plasmídicos adicionales a otras familias de antibióticos, lo cual coincide con la ausencia de multirresistencia en nuestro aislado mcr-1 positivo (sensible a cefalosporinas, aminoglucósidos y fluorquinolonas). Para conocer el grado de diseminación de este determinante en nuestro país y los factores que la favorecen, sería interesante realizar estudios de monitorización en aislados clínicos.

Como conclusión, colistina es una de las alternativas activas frente a enterobacterias y gramnegativos multirresistentes como Acinetobacter baumannii y Pseudomonas aeruginosa, cuya prevalencia de resistencia mediada por plásmidos en aislados clínicos es muy baja en nuestro medio. Sin embargo, consideramos importante monitorizar la frecuencia de este determinante.

Bibliografía
[1]
Y.Y. Liu, Y. Wang, T.R. Walsh, L.X. Yi, R. Zhang, J. Spencer, et al.
Emergence of plasmid-mediated colistin resistance mechanism MCR-1 in animals and human beings in China: A microbiological and molecular biological study.
Lancet Infect Dis, 16 (2016), pp. 161-168
[2]
M. Doumith, G. Godbole, P. Ashton, L. Larkin, T. Dallman, M. Day, et al.
Detection of the plasmid-mediated mcr-1 gene conferring colistin resistance in human and food isolates of Salmonella enterica and Escherichia coli in England and Wales.
J Antimicrob Chemother, 71 (2016), pp. 2300-2305
[3]
M. Rapoport, D. Faccone, F. Pasteran, P. Ceriana, E. Albornoz, A. Petroni, et al.
First description of mcr-1-mediated colistin resistance in human infections caused by Escherichia coli in Latin America.
Antimicrob Agents Chemother, 60 (2016), pp. 4412-4413
[4]
J. Coetzee, C. Corcoran, E. Prentice, M. Moodley, M. Mendelson, L. Poirel, et al.
Emergence of plasmid-mediated colistin resistance (MCR-1) among Escherichia coli isolated from South African patients.
S Afr Med J, 106 (2016), pp. 449-450
[5]
T.J. Johnson, E.M. Bielak, D. Fortini, L.H. Hansen, H. Hasman, C. Debroy, et al.
Expansion of the IncX plasmid family for improved identification and typing of novel plasmids in drug-resistant Enterobacteriaceae.
[6]
L.R. Perez.
Evaluation of polymyxin susceptibility profile among KPC-producing Klebsiella pneumoniae using E-test and MicroScan WalkAway automated system.
APMIS, 123 (2015 Nov), pp. 951-954
[7]
F. Pérez-García, E. Cercenado, M. Marín, E. Bouza.
Falsa resistencia de bacilos Gram-negativos a la colistina con el panel MicroScan® Neg MIC 44 en comparación con el método estándar de microdilución en caldo y con E-test.
XX Congreso Nacional SEIMC, (2016),
[8]
A. Quesada, M. Ugarte-Ruiz, M.R. Iglesias, M.C. Porrero, R. Martínez, D. Florez-Cuadrado, et al.
Detection of plasmid mediated colistin resistance (MCR-1) in Escherichia coli and Salmonella enterica isolated from poultry and swine in Spain.
Res Vet Sci, 105 (2016), pp. 134-135
[9]
M.F. Kluytmans-van den Bergh, P. Huizinga, M.J. Bonten, M. Bos, K. de Bruyne, A.W. Friedrich, et al.
Presence of mcr-1-positive Enterobacteriaceae in retail chicken meat but not in humans in the Netherlands since 2009.
[10]
H. Du, L. Chen, Y.W. Tang, B.N. Kreiswirth.
Emergence of the mcr-1 colistin resistance gene in carbapenem-resistant Enterobacteriaceae.
Lancet Infect Dis, 16 (2016), pp. 287-288
[11]
A. Li, Y. Yang, M. Miao, K.D. Chavda, J.R. Mediavilla, X. Xie, et al.
Complete sequences of mcr-1-harboring plasmids from extended spectrum β-lactamase- and carbapenemase-producing Enterobacteriaceae.
Antimicrob Agents Chemother, 60 (2016), pp. 4351-4354
Copyright © 2016. Elsevier España, S.L.U. and Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Opciones de artículo
Herramientas
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos